WWW.NET.KNIGI-X.RU
БЕСПЛАТНАЯ  ИНТЕРНЕТ  БИБЛИОТЕКА - Интернет ресурсы
 

Pages:   || 2 |

«АЗАСТАН РЕСПУБЛИКАСЫ ЛТТЫ ЫЛЫМ АКАДЕМИЯСЫНЫ ХАБАРЛАРЫ ИЗВЕСТИЯ НАЦИОНАЛЬНОЙ АКАДЕМИИ НАУК РЕСПУБЛИКИ КАЗАХСТАН СЕРИЯ АГРАРНЫХ НАУК 6(6) АРАША – ЖЕЛТОСАН 2011 Ж. НОЯБРЬ – ДЕКАБРЬ 2011 Г. ...»

-- [ Страница 1 ] --

ISSN 2224-526

2011•6

АЗАСТАН РЕСПУБЛИКАСЫ

ЛТТЫ ЫЛЫМ АКАДЕМИЯСЫНЫ

ХАБАРЛАРЫ

ИЗВЕСТИЯ

НАЦИОНАЛЬНОЙ АКАДЕМИИ НАУК

РЕСПУБЛИКИ КАЗАХСТАН

СЕРИЯ АГРАРНЫХ НАУК

6(6)

АРАША – ЖЕЛТОСАН 2011 Ж.

НОЯБРЬ – ДЕКАБРЬ 2011 Г.

ИЗДАЕТСЯ С ЯНВАРЯ 2011 Г.

АЛМАТЫ

НАН РК

Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан Бас редактор Р А академигi Т.И. Есполов

Р е д а к ц и я а л а с ы:

Р А-ны академигi Байзаов С. Б. (бас редакторды орынбасары), Р А-ны академигi Дйсенбеков З.Д., Р А-ны академигi Елешев Р. Е., Р А-ны академигi Iзтаев А. I., Р А-ны академигi Медеубеков К.У., Р А-ны академигi Шоманов У. Ш., техника ылымдарыны докторы, профессор Кешуов С. А., ауылшаруашылыы ылымдарыны докторы, профессор Олейченко С. И., малдрiгерi ылымдарыны докторы, профессор Сансызбай А.Р., биология ылымдарыны докторы, профессор Шабдарбаева Г. С., малдрiгерi ылымдарыны кандидаты, доцент Иманалиев А. К. (жауапты хатшы) Главный редактор академик НАН РК Т.И. Есполов

Р е д а к ц и о н н а я к о л л е г и я:

академик НАН РК Байзаков С. Б., (заместитель главного редактора), академик НАН РК Дуйсенбеков З.Д., академик НАН РК Елешев Р.Е., академик НАН РК Изтаев А.И., академик НАН РК Медеубеков К.У., академик НАН РК Чоманов У.Ч., д.т.н., проф. Кешуов С.А., д.с.-х.н., проф. Олейченко С.И., д.в.н., проф.



Сансызбай А.Р., д.б.н., проф.Шабдарбаева Г.С., к.в.н., доц. Имангалиев А.К. (ответственный секретарь) E d i t o r-i n-c h i e f academician of NAS of the RK Espolov T.I.

E d i t o r i a l s t a f f:

academician of NAS of the RK Baizakov S.В., (deputy editor-in-chief), academician of NAS of the RK Duisenbekov Z.D., academician of NAS of the RK Eleshev R.E., academician of NAS of the RK Iztaev A.I., academician of NAS of the RK Medeubekov K.U., academician of NAS of the RK Chomanov U.Ch., doctor of technical sciences, prof. Keshuov S.A., doctor of agricultural sciences, prof. Oleichenko S.I., doctor of veterinary sciences, prof. Sansyzbai A.R., doctor of biological sciences, prof. Shabdarbaeva G.S., candidate of veterinary sciences Imangaliev A.K. (secretary) Известия Национальной академии наук Республики Казахстан. Серия общественных и гуманитарных наук.

ISSN 2224-526Х Cобственник: РОО «Национальная академия наук Республики Казахстан» (г. Алматы) Свидетельство о постановке на учет периодического печатного издания в Комитете информации и архивов Министерства культуры и информации Республики Казахстан № 10895-Ж, выданное 30.04.2010 г.

Периодичность 6 раз в год Тираж: 300 экземпляров Адрес редакции: 050010, г.Алматы, ул.Шевченко, 28, ком.219-220, тел. 272-13-19, 272-13-18 Адрес типографии: ИП «Аруна», г. Алматы, ул. Муратбаева, 75

–  –  –

УДК 619:616.9+636.5 Н.Г. АСАНОВ, У.Ж. ОМАРБЕКОВА

ВОПРОСЫ БИОЛОГИЧЕСКОЙ БЕЗОПАСНОСТИ В

ПРОМЫШЛЕННОМ ПТИЦЕВОДСТВЕ КАЗАХСТАНА

(Казахский Национальный аграрный университет, г. Алматы) Биологическая безопасность рассматривается как комплексный подход по обеспечению благополучия птицеводческих хозяйств от любого вида биологической опасности как естественного, так и искусcтвенного характера. Для птицеводческой отрасли наибольшую опасность представляют вирусные патогенны. Характер серьезной биологической и социальной угрозы в особенности приобретает проблема гриппа. В связи с этим приведены данные эпизоотологического мониторинга в отношении вируса гриппа, а также чрезвычайно опасных для птиц таких вирусных болезней, как болезнь Ньюкасла и инфекционный бурсит. При этом особую угрозу представляют новые особо вирулентные эпизоотические штаммы вышеуказанных инфекций, против которых используемые в РК вакцинные препараты могут оказаться малоэффективными.

Птицеводство в РК представлено, также как и во многих других странах, хозяйствами промышленного типа, а также мелкотоварными приусадебными или придворными индивидуальными домашними хозяйствами. Настоящий период в РК характеризуется некоторой стабилизацией в отрасли и имеется значительный потенциал для её дальнейшего развития. Однако одним из сдерживающих факторов является наличие инфекционных болезней. Профилактика инфекционных болезней ассоциируется с биологической безопасностью. Биобезопасность – это системный подход к предотвращению контакта патогенных микроорганизмов с животными. Для начала организации схем безопасности теоретически идентифицируются все пути проникновения патогенных микроорганизмов на данное предприятие.

Существует три источника передачи инфекции: от старых животных к молодым; от больных к здоровым;

из внешней среды (транспорт, персонал, предметы ухода, подстилки, воздух, насекомые, грызуны).

Признавая эти факторы и их потенциальные последствия, разрабатывается система безопасности, т.е.

комплекс действий и мероприятий для их предотвращения. При этом совсем необязательно ожидать результаты исследований. В случае внедрения нового инфекционного агента (т.е. провал существующей системы безопасности), установливаются потенциально возможные источники данного возбудителя и разрабатываются шаги по усовершенствованию системы, например, новый комплекс мероприятий с учетом специфики предприятия.

Итак, важнее выделить не возбудителя, а недоработки в системе биобезопасности, позволяюшие вызвать заболевание. Биобезопасность является частью решения вирусологических, бактериологических, иммунологических и других проблем.

Ретроспективный эпизоотологический анализ инфекционных болезней, регистрируемых среди птицепоголовья в РК показывает, что из вирусных болезней следует отметить болезнь Ньюкасла, инфекционную бурсальную болезнь, инфекционный бронхит, инфекционный ларинготрахеит, болезнь Марека, синдром снижения яйценоскости – 76, оспу птиц, инфекционный энцефаломиелит, инфекционную анемию; из бактериальных: респираторный микоплазмоз, пастереллез, сальмонеллез, колибактериоз [1].

Либерализация границ племенной и сырьевой зон, расширение межправительственных и коммерческих связей сопровождается дополнительным риском изменения эпизоотической ситуации.

Одним из негативных явлений в птицеводстве является отсутствие системной статистики по заболеваемости инфекционными болезнями птиц, что затрудняет оценить эпизоотическую ситуацию.

Поэтому часто приходится ориентироваться перечнем и объемом противоэпизоотических средств, применяемых против того или иного заболевания. Определенный материал для анализа дали бы мониторинг эпизоотической ситуации по инфекционным болезням птиц в различных регионах Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан нашей республики. Термин «мониторинг» появился в 1973 г. в связи с разработкой международной программы «Человек и биосфера», и тогда же было дано его определение. Мониторинг – система повторных наблюдений за состоянием объекта или явления с заранее определенной целью по заранее разработанной программе. Объект эпизоотологического мониторинга определяется исходя из поставленной цели.

Главная цель эпизоотологического мониторинга - создание единой государственной системы ветеринарного надзора на основе современных методов диагностики, индикации и идентификации возбудителей инфекционных болезней птиц.

Эпизоотологический мониторинг (ЭМ) должен включать в себя:

организацию системы постоянного получения проб для диагностических исследований; разработку перечня неблагополучных территорий и кадастра очагов; формирование информационных массивов по количественным и качественным характеристикам эпизоотической ситуации по времени и конкретным территориям; специализированную обработку информации; оценку эпизоотической ситуации в сопредельных государствах; иммунологический и диагностический мониторинг инфекционных заболеваний птиц, распространенных в РК; подготовку комплексных таблиц и карт, отражающих проанализированную информацию; формирование компьютерных баз данных и оснащение компьютерной техникой и современной связью центральных ветеринарных органов и диагностических центров с ветеринарной службой республик и областей. Нам бы хотелось проанализировать эпизоотическую ситуацию по таким особо опасным инфекционным болезням птиц как грипп, болезнь Ньюкасла и инфекционный бурсит.





Грипп во все времена был одной из сложных проблем как медицины, так и ветеринарии. Одной из главных причин этого является особенность молекулярной структуры вириона, способная к высокой степени мутации.

Наибольшую озабоченность мирового сообщества вызывает, так называемый, высокопатогенный грипп птиц. В настоящее время высокопатогенный грипп птиц (ВГП) А (H5N1) широко распространен в странах Азии, Европы и Африки. В некоторых странах Юго-Восточной Азии, Турции, Иране, Азербайджане, Нигерии и др. вспышки зачастую осложнялись заболеваемостью и гибелью людей. По данным ВОЗ, в период с 2003 по 2007 гг. ВГП вызвал среди населения 14 стран более 492 случая тяжелого заболевания людей, в том числе в 291 случае – с летальным исходом.

В Казахстане ВГП впервые был зарегистрирован в июле 2005 г. в Павлодарской области, затем на территориях Акмолинской, Северо-Казахстанской и Карагандинской областей. Проведенные экологические и молекулярно-биологические исследования вируса гриппа А показали, что все варианты этого серотипа происходят из птичьего резервуара. В связи с этим изучение циркуляции вируса гриппа А среди диких птиц в регионах, расположенных на пути их миграции, является необходимым элементом для оптимизации мероприятий по контролю над распространением возбудителя.

Изучение гриппа среди мигрирующих птиц Северного и Восточного Каспия 2002-2009 гг. выявили циркуляцию вируса гриппа А среди 15 видов утиных, 8-чайковых и 2-поганковых (Саятов М.Х., Кыдырманов А.И.). По их данным впервые изолированы вирусы с шестью подтипами НА (3, 4, 5, 11, 13, 16) и пятью подтипами NA (1, 2, 3, 6, 8) в восьми различных комбинациях. Также были получены доказательства циркуляции и при серологическом мониторинге. Полученные данные подтверждают предположение о значительной роли диких птиц в распространении гриппа. Однако отсутствие единой конкретной программы эпизоотологического мониторинга по гриппу птиц не позволяет оперативно и достоверно представлять истинную картину ситуации в Республике Казвхстан.

Другой инфекцией, представляющей наибольшую опасность птицеводству, является болезнь Ньюкасла. По данным Международной организации по защите здоровья животных (МЭБ), БН имела глобальное распространение на всех континентах мира, зарегистрирована в 123 странах мира, в т.ч. в РК. По нашим данным, пик заболеваемости в РК отмечался в 1996-2000 гг. В настоящее время утверждать, что нашим птицеводческим хозяйствам не угрожает БН не приходится, поскольку проведенный вирусологический мониторинг в юго-восточной части РК позволяет выделить достаточно активные штаммы полевого вируса БН [2, 3]. Участие диких птиц в эпизоотических процессах БН были неоднократно указаны учеными многих стран мира.

№ 6. 2011 Среди вирусных болезней птиц в последние годы особое место занимает инфекционный бурсит (ИБ). В РК ИБ регистрируется, по официальной статистике, с 1982 года и получила достаточно широкое распространение.

Роль племенных хозяйств (не считая первичного заноса в республику) в распространении болезни, на наш взгляд, несколько преувеличена. В свете изложенного мы считаем, что первоисточником вспышки болезни в большинстве случаев являются полевые изоляты, ранее циркулировавшие в данном хозяйстве, у которых при определенных условиях усилилась вирулентность, и они не всегда связаны с заносом вируса извне.

Анализ ситуации, сложившейся на одной из птицефабрик близ города Алматы во время вспышки ИБ, показал, что на территории фабрики до начала заболевания были случаи гибели синантропной птицы, в рационах был отмечен дефицит протеина, практиковалось выращивание в одном помещении двух и более партий цыплят с разницей в возрасте 10-15 суток. Поэтому все заверения отдельных ветспециалистов, что птицеводческие хозяйства до вспышки были благополучными по ИБ и причины появления были связаны с импортом инкубационного яйца, суточного молодняка из стран, неблагополучных по данному заболеванию, не всегда корректны.

Результаты серологического мониторинга крови взрослой птицы на той же фабрике, согласно которой в 80-90 % случаях РДП была положительной, низкие показатели бурсального индекса у цыплят, где не наблюдали клинической картины заболевания. Вышеуказанное свидетельствует о циркуляции полевого вируса с умеренной и низкой патогенности и об их неблагополучии по ИБ задолго до массового проявления заболевания.

Приведенные данные анализа эпизоотической ситуации по наиболее важным инфекционным болезням птиц доказывают о сложности этих процессов, при этом каждая нозологическая единица имеет свои особенности. При этом следует отметить, что основой рационального планирования и осуществления мероприятий по борьбе с инфекционными болезнями и оценке их эффективности является эпизоотологический мониторинг. Он позволяет выявить причины и проследить эпизоотические и социальноэкономические последствия этих изменений, обеспечивает комплексную и быструю корректировку противоэпизоотических мероприятий и разработку периодических прогнозов.

ЛИТЕРАТУРА

1. Асанов Н.Г. Эпизоотическая ситуация по инфекционным болезням птиц в Казахстане //Материалы межд.науч.производ.конф., посвящ. 75-летию КанНИВИ. Алматы-2000. С. 56-58.

2. Асанов Н.Г., Мусина Г.Ш. К вопросу тропизма вируса болезни Ньюкасла кур. //Науч.журнал «Исследования и результаты» КазНАУ. – Алматы, 2002. С.116-119.

3. Асанов Н.Г. Ньюкасл ауруыны індеттік ерекшеліктері // Жаршы. 2002. №5. Б. 28-31

АЗАСТАНДАЫ НЕРКСІПТІК СШАРУАШЫЛЫЫНЫ

БИОЛОГИЯЛЫ АУІПСІЗДІГІ Резюме Табии жне жасанды сипаттаы кез келген биологиялы ауіпсізділіктен сшаруашылытарын орау жалпы биологиялы ауіпсіздікті бір баыты болып есептелінеді. с шаруашылытарына вирусты патогендер аса ауіпті, оныі ішінде тмау мселесі тек биологиялы ана емес жне леуметтік маызы бар. Осыан байланысты эпизоотологиялы мониторинг тмауа, сонымен атар старды аса ауіпті аурулары Ньюкасл жне инфекциялы бурситке жргізілген. Аталан с ауруларыны аса уытты індеттік штаммдары ауіпті болып саналады, ал Р олданылатын вакцинды препараттар нтиже бермеуі ммкін.

Questions To Biological Safety In Industrial Fowling Kazakhstan Summary Biosecurity is regarded as a comprehensive approach to the welfare of poultry from any kind of biological hazards both natural and artificial nature of the. For the poultry industry often sold articles danger predstvalyayut viral pathogens and especially the problem of influenza seriously takes on the character of biological and social risk n this regard, these data epizootic monitoring against influenza virus, but also extremely dangerous to birds of viral diseases like Newcastle disease, and infectious bursitis. In this particular threat is a particularly virulent new strains of epizootic above infections, against which the vaccine used in the RKz preparations can be maoleffektivnymi Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан УДК 619:616.981.48:49-097:636 К.Б. БИЯШЕВ, Ж.С. КИРКИМБАЕВА, С. Е. ЕРМАГАМБЕТОВА, Б.К. БИЯШЕВ, А.Ж. МАКБУЗ, Н.Б. САРСЕМБАЕВА

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ВЛИЯНИЯ БАКТЕРИЦИНПРОДУЦИРУЮЩИХ

ШТАММОВ E.COLI НА КЛЕТОЧНЫЕ ФАКТОРЫ ЕСТЕСТВЕННОЙ

РЕЗИСТЕНТНОСТИ ОРГАНИЗМА ЯГНЯТ

(Казахский Национальный аграрный университет, г. Алматы) Приведены данные по определению влияния бактерицинпродуцирующих штаммов E.coli на клеточные факторы естественной резистентности организма ягнят.

Проведенные исследования показали, что выпаивание новорожденным ягнятам в первые 20-30 минут жизни (до приема молозива) препаратом из штамма E.coli 64 в дозе 1010 КОЕ оказывает благоприятное влияние на процесс фагоцитоза лейкоцитов. Так, под влиянием этой дозы повышается процент фагоцитоза на 6,2%, фагоцитарный индекс на 18,2% и индекс завершенности фагоцитоза на 36,1%. Тогда, как доза 5х109 КОЕ слабо стимулирует, а доза 2х1010 КОЕ, наоборот, угнетает фагоцитоз по сравнению с контрольной группой.

Пробиотиками называются живые микроорганизмы, которые, будучи введенными в организм, благотворно влияют на состояние здоровья животных и человека. Еще И.И. Мечников показал полезное воздействие на здоровье человека болгарской палочки, и в течение многих лет накоплен значительный опыт по применению различных микроорганизмов в качестве пробиотиков.

Причиной необходимости использования пробиотиков является нарушение микроэкологии в организме животных и человека [1].

В последние годы для коррекции кишечного биоценоза в рацион животных дополнительно начали вводить пробиотики, содержащие полезные для кишечника бактерии, имеющие для животных терапевтическое значение, включая профилактику неинфекционных и инфекционных болезней, вызванных алиментарными причинами. Регулярное использование пробиотических препаратов предупреждает развитие дисбактериозов, снижает риск избыточной контаминации кишечника условно патогенными микроорганизмами, способствует профилактике бактерийных и вирусных кишечных инфекций, способствует восстановлению анатомической и функциональной целостности иммунной системы у домашних и сельскохозяйственных животных, повышает усвоение кормов и скорость роста животных. Пробиотические микроорганизмы участвуют в биотрансформации лекарственных средств, регуляции белкового, углеводного, липидного и кальциевого обмена, утилизируют лактозу и восстанавливают кишечное микробное пищеварение. В последние годы технология рационального кормления животных с использованием пробиотиков становится актуальной и рассматривается как мощный потенциал ветеринарного рынка [2].

Исследования проводились в лаборатории противобактериозной биотехнологии Казахского Национального аграрного университета.

Нами проведено исследование по определению влияния бактерицинопродуцирующего штамма E.coli 64 на клеточные факторы естественной резистентности организма у новорожденных ягнят.

Пробы крови для анализов брали из яремной вены, каждый раз в одно и то же время. Исследования крови у новорожденных ягнят проводили в первые 30 минут и час, а затем через 24 часа, 48 часов, 7 суток, 14 суток и 21сутки после рождения.

Нами изучено влияние препарата из штамма E.coli 64 в следующих дозах 5х109 КОЕ, 1010 КОЕ и 2х1010 КОЕ на лейкоцитарную формулу и фагоцитарную активность лейкоцитов.

До и после выпойки исследуемого препарата в дозе 5х109 КОЕ в показателях лейкоцитарной формулы как у животных контрольной, так и у животных опытной группы особой разницы не наблюдалось. Здесь следует отметить, что в первые дни жизни после рождения наиболее активную роль в защите играют клеточные факторы естественной резистентности, поэтому содержание нейтрофилов в эти периоды наиболее высокое, чем лимфоцитов.

№ 6. 2011 У животных опытной группы с первых суток после выпойки препарата происходит снижение уровня нейтрофилов и повышение количества лимфоцитов. Установлено, что уровень нейтрофилов снизился в среднем на 24,2%, в то же время происходит повышение уровня лимфоцитов в пределах 25,1.%. К 14 суткам процент нейтрофилов у ягнят опытной группы снизился на 36,8%, а процент лимфоцитов повысился в пределах 47,7 %.

При введении препарата в дозе 1010 КОЕ отмечаются следующие изменения в показателях, которые приведены в таблице 1.

–  –  –

Обозначение: О – опытные животные, К – контрольная группа Б – базофилы, Э – эозинофилы, М – миелоциты, Ю – юные, П – палочкоядерные, С – сегментоядерные, Л – лимфоциты, М - моноциты Результаты проведенных исследований, представленные в таблице 1, свидетельствуют о том, что у ягнят опытной группы в первые дни жизни количество нейтрофилов превышало количество лимфоцитов, а с увеличением возраста происходит постепенное снижение количества нейтрофилов и повышение количества лимфоцитов. Так, до выпойки препарата на долю нейтрофилов приходилось 72,4 % всех лейкоцитов крови. Начиная с первых суток жизни, количество нейтрофилов уменьшилось и к 21 дню жизни составило 31,3 %. На 3 сутки после рождения доля нейтрофилов от общего количества лейкоцитов составила у ягнят опытной группы 47,9 %, на 7 сутки жизни этот показатель был равен 32,9 %.

Динамика содержания лимфоцитов характеризовалась постепенным увеличением их количества в зависимости от возраста. У ягнят опытной группы в первые часы жизни на долю лимфоцитов приходилось 21,4 %, на 7 сутки после рождения этот показатель был равен – 56,4 %, Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан на 14 день он равнялся – 60,6 %, к 21 дню исследования этот показатель равнялся 61,8 % от общего количества.

При введении препарата в дозе 2х1010 КОЕ отмечаются следующие изменения в показателях: количество нейтрофилов, начиная с 1-х дней жизни, постепенно снижается и к 14 дню жизни на долю нейтрофилов приходится 36,1 %. Разница в содержании нейтрофилов появляется к 21 дню после рождения, когда показатели опытной группы были на 7,8 % больше чем у контрольной.

Анализ полученных результатов показывает, что препарат из штамма E.coli 64 в дозе 1010 КОЕ способствует более быстрой нормализации нейтрофилов, чем в дозах 5х109 КОЕ и 2х1010 КОЕ. Так, процент нейтрофилов при дозе введения препарата 1010 КОЕ на 14 сутки жизни ягнят снизился на 15,9%, а при дозе 5х109 и 2х1010 КОЕ их количество оставалось на достаточно высоком уровне. Абсолютные показатели лимфоцитов были выше у ягнят, получивших препарат в дозе 1010 КОЕ на 9-11%, чем у ягнят, получавших препарат в дозах 5х109 КОЕ и 2х1010 КОЕ соответственно - 3-4% и 1-2%.

Одним из основных показателей естественной резистентности организма является фагоцитарная активность лейкоцитов. В связи с этим нами изучено влияние препарата из штамма E.coli 64 в дозах 5х109 КОЕ, 1010 КОЕ и 2х1010 КОЕ на фагоцитарную активность лейкоцитов. Фагоцитарную активность лейкоцитов определяли методом, который основан на визуальном учете числа бактерий, захваченных или переваренных нейтрофилами крови животных в процессе совместного выдерживания жизнеспособных эшерихий и лейкоцитов соответственно в пробирке или на поверхности питательного агара.

Результаты изучения влияния препарата из штамма E.coli 64 в дозе 5х109 КОЕ на фагоцитарную активность лейкоцитов представлены в таблице 2.

–  –  –

Из данных 2 таблицы видно, что процент фагоцитоза у обеих групп животных, начиная с первых суток, повышается и удерживается на высоком уровне до конца исследования. Максимальное повышение процента фагоцитоза отмечается на 14 сутки после рождения ягнят. На этот период процент фагоцитоза у ягнят опытной группы повышается на 91,2 %.

Такая же динамика отмечается и в отношении фагоцитарного индекса, показатель которого, начиная с 1-х суток после рождения повышается и удерживается на высоком уровне до конца исследований. На 14 сутки после рождения этот показатель повысился у животных опытной группы в 3,01 раза.

№ 6. 2011 Индекс завершенности фагоцитоза у ягнят контрольной и опытной группы, начиная с первых дней жизни, повышается, достигая максимальных величин на 21 день после рождения, соответственно с 0,30 до 0,5 и 0,30 до 0,56. То есть, у контрольной группы ягнят индекс завершенности фагоцитоза увеличился в 1,43 раза, а у опытной группе ягнят в 1,95 раза.

Результаты изучения влияния препарата из штамма E.coli 64 в дозе 1010 КОЕ на фагоцитарную активность лейкоцитов представлены в таблице 3.

Таблица 3. Фагоцитарная активность лейкоцитов крови у новорожденных ягнят до и после выпойки их препаратом из штамма E.

coli 64 в дозе 1010 КОЕ

–  –  –

Данные таблицы 3 свидетельствуют, о том, что препарат в дозе 1010 КОЕ оказывает существенное влияние на процент фагоцитоза, фагоцитарный индекс и индекс завершенности фагоцитоза.

До выпойки молозива процент фагоцитоза у ягнят контрольной и опытной групп был на уровне 32,2 - 32,3. Разница в этом показателе появляется после выпойки препаратом. У ягнят опытной группы процент фагоцитоза на протяжении всего опыта был выше, чем у ягнят контрольной группы и составил на 1-е сутки 6,2 %, 7 сутки 7,8%, на 21 сутки после рождения 8,6%.

Такая же динамика наблюдается и по фагоцитарному индексу, который с первых дней жизни повышается и удерживается на высоком уровне до конца исследований. При этом следует отметить, что у ягнят опытной группы фагоцитарный индекс был выше. Так, начиная с 1-х суток после рождения, у ягнят опытной группы показатели фагоцитарного индекса превышали показатели у ягнят контрольной группы на 1-е сутки на 5,6 %, на 3 сутки на 13,5 %, на 14 сутки на 16,5 % и на 21 сутки после рождения на 18,2%.

Индекс завершенности фагоцитоза с увеличением возраста у ягнят обеих групп также повышается. Разница заключается в том, что на протяжении всего периода исследований индекс завершенности фагоцитоза у ягнят опытной группы был выше и превышал этот показатель на 1-е сутки на 6,4 %, на 3 сутки на 36,1 % и 21 сутки после рождения на 29,1 %.

На основании проведенных исследований следует отметить, что препарат из штамма E.coli 64 в дозе 1010 КОЕ оказывает стимулирующее влияние на показатели клеточного иммунитета.

При введении препарата из штамма E.coli 64 в дозе 2х1010 КОЕ отмечаются следующие изменения. После введения препарата, начиная с 14 дней жизни, процент фагоцитоза у ягнят опытной группы увеличивается, чем у контрольной группы. На 21 день жизни процент фагоцитоза у опытных ягнят повысился всего в 1,6 раза, у контрольных - в 1,1 раза. Полученные данные по фагоцитарной активности лейкоцитов свидетельствуют о том, что препарат из штамма E.coli 64 в дозе 2х1010 КОЕ умеренно угнетает клеточные факторы иммунитета, о чем говорит снижение процента фагоцитоза, фагоцитарного индекса и индекса завершенности фагоцитоза по сравнению с Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан контролем. Анализируя данные о влиянии препарата из штамма E.coli 64 на фагоцитарный индекс, следует отметить, что препарат в больших дозах не обладает стимулирующим действием.

Свидетельством тому являются более низкие показатели фагоцитарного индекса у опытных ягнят по сравнению с ягнятами контрольной группы.

Несколько иная картина отмечается в динамике индекса завершенности фагоцитоза. В первые три дня существенной разницы в этом показателе у ягнят опытной и контрольной групп не наблюдается. В последующие дни жизни у ягнят опытной группы индекс завершенности фагоцитоза несколько выше, чем у контрольных. Так, на 21 день после рождения индекс завершенности фагоцитоза у ягнят опытной группы был больше на 14 %, чем у контрольных ягнят.

Проведенные исследования показали, что выпаивание новорожденных ягнят в первые 20минут жизни (до приема молозива) препаратом из штамма E.coli 64 в дозе 1010 КОЕ оказывает благоприятное влияние на процесс фагоцитоза лейкоцитов. Так, под влиянием этой дозы повышается процент фагоцитоза на 6,2%, фагоцитарный индекс на 18,2% и ифФндекс завершенности фагоцитоза на 36,1%. Тогда как доза 5х109 КОЕ слабо стимулирует, а доза 2х1010 КОЕ, наоборот, угнетает фагоцитоз по сравнению с контрольной группой.

БАКТЕРИЦИН НДІРУШІ E. COLI ШТАМЫНЫ ОЗЫ ОРГАНИЗМІ

ТАБИИ РЕЗИСТЕНТТІЛІГІНІ КЛЕТКАЛЫ ФАКТОРЛАРЫНА ТИГІЗЕТІН СЕРІН АНЫТАУ

–  –  –

Зерттеулер нтижелері крсеткендей, жаа туылан озылара міріні алашы 20-30 минутында (уыз берместен брын) E.coli 64 штамынан даярланан препаратын 1010 КТБ. Крсетілген препарат млшері серінен фагоцитоз 6,2%-а, фагоцитарлы индекс 18,2%-а жне фагоцитозды аяталу индексі 36,1%-а жоарылаан. Ал препаратты 5х109 КТБ млшері баылау топтарындаы жануарларда фагоцитозды лсіз стимульдейтінін, 2х1010 КТБ млшер керісінше фагоцитоз процессін тежейтінін байатты.

–  –  –

Studies have shown that newborn lambs watering first 20-30 minutes of life (up to receive colostrum) strain of E.coli 64 CFU drug at a dose of in 1010 has a beneficial effect on the process of phagocytosis of leukocytes. Thus, under the influence of this dose increases the percentage of phagocytosis by 6.2%, phagocytic index by 18.2% and the index of completeness of phagocytosis by 36.1%. Then, as the dose 5х109 weakly stimulate CFU and CFU dose 2х1010 conversely inhibit phagocytosis compared to the control group.

ЛИТЕРАТУРА

1.Тимошко М.А. Микрофлора пищеварительного тракта молодняка сельскохозяйственных животных. Кишинев.

1990, 187с.

2.Тараканов Б.В. Механизм действия пробиотиков на микрофлору пищеварительного тракта и организм животных.// Ветеринария. 2000. №1. С.48-54.

№ 6. 2011 УДК: 616.993-002.9-078:576.89:616.155 Г.С. ШАБДАРБАЕВА, А.И. БАЛГИМБАЕВА

СОСТОЯНИЕ ДИАГНОСТИКИ

КРОВЕПАРАЗИТАРНЫХ БОЛЕЗНЕЙ ЖИВОТНЫХ*

–  –  –

Приведены результаты завершенных исследований по кровепаразитозам животных, проведенных в рамках выполнения подпроекта, финансируемого Всемирным банком.

Приведены эпизоотологические данные, экономический и экологический ущерб от кровепаразитозов, акцентировано внимание на важности диагностических исследований при трансмиссивных болезнях.

Приведены способы приготовления диагностикумов и их компонентов на основе «феномена антиидиотипии» при анаплазмозе, пироплазмозе, нутталиозе, трипаносомозе. Апробация диагностикумов в РСК, РНГА и ИФА показала достоверно положительные результаты. Предложен технологический процесс для приготовления диагностикумов.

Анализ литературных, статистических данных и результатов многолетних собственных исследований позволяют сделать неутешительные выводы об ухудшении эпизоотической и эпидемиологической обстановки по многим паразитарным болезням, в т.ч. и по кровепаразитарным болезням.

Изменение социально-экономических условий жизни населения, появление частной собственности, развитие фермерства и индивидуального производства, усиливающая миграция населения не только внутри отдельной страны, но и из стран ближнего и дальнего зарубежья, интенсификация антропогенного преобразования природы, приводящего к изменению условий обитания возбудителей кровепаразитарных болезней и их биологических переносчиков в окружающей среде, указывают на необходимость пересмотра и корректировки существующих подходов к диагностике и профилактике этой группы опасных трансмиссивных болезней, распространяемых через кровососущих иксодовых клещей [1].

В настоящее время в связи с наметившимся экономическим подъемом в Республике Казахстан и проводимыми Правительством РК реформами, в аграрном секторе наметились позитивные сдвиги. Начали восстанавливаться некогда заброшенные фермы, появилось много хозяйствующих субъектов – частных предпринимателей, приусадебных и крестьянских хозяйств, которые занимаются разведением животных и птицы. И, как правило, наряду со специализированными по отраслям объединениями с полным зоотехническим циклом, отвечающим требованиям ветеринарного законодательства, возникли хозяйства с экстенсивной системой содержания животных и птиц.

Способы выращивания и содержания животных разные в зависимости от возможностей владельцев и, чаще всего, животные находятся в условиях, наиболее приближенных к естественным, что, однако, не способствует достижению высокой сохранности поголовья и продуктивности, создает зависимость от сезона года, климатических факторов, наличия и качества кормов и др. Кроме того, мелкие хозяйствующие субъекты не имеют возможности содержать в штате ветеринарного специалиста и проводить на достаточно высоком и грамотном уровне все ветеринарные мероприятия, в том числе и противопаразитарные.

В республике активно развиваются спортивное и племенное коневодство, племенное скотоводство и птицеводство, кинология, регулярно проводятся разного уровня конные спортивные состязания, выставки, аукционы животных, производится ввоз и вывоз племенных животных как из ближнего, так и из дальнего зарубежья, активный обмен и купля-продажа животных между отдельными хозяйствующими субъектами.

При проведении вышеуказанных мероприятий актуальным является своевременная качественная диагностика особо опасных, сертифицируемых при ввозе и вывозе животных кровепаразитарных болезней, таких как трипаносомоз и нутталиоз лошадей, пироплазмоз и анаплазмоз рогатого скота и других.

Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан Кровепаразитарные болезни сельскохозяйственных животных, вызываемые эндоглобулярными (внутриклеточными) паразитами и жгутиковыми (пироплазмозы, бабезиозы, нутталиоз, тейлериозы, анаплазмозы, трипаносомозы) широко распространены в Казахстане и наносят животноводству республики ощутимый ущерб. Ущерб складывается от резкого снижения всех видов продуктивности, недополучения потомства, невозможности ведения племенной работы, массовой гибели животных. Отмечено, что у коров при тейлериозе удой снижается вдвое и после переболевания молочная продуктивность восстанавливается всего лишь на 70-75%, у больных быков необратимо нарушается спермогенез, смертность у племенного высокопродуктивного скота достигает до 40-80% [2].

В Казахстане изучению эпизоотологии кровепаразитарных болезней посвящено значительное число работ, где представлены видовой состав кровепаразитов, их переносчики, эпизоотологические особенности заболеваний с учетом различных климатических условий, экологических факторов регионов республики. Зараженность кровепаразитозами колеблется от 3 до 40%, тейлериоз регистрируется в 95,0%, пироплазмоз в 4,5%, франсаиеллез в 0,5% при изучении соотношения кровепаразитарных заболеваний [3,4,5,6].

Кровепаразитарные болезни относятся к группе трансмиссивных инвазий, т.е. передаваемых через кровососущих членистоногих, что определяет ряд биологических и эпизоотологических особенностей и обосновывает необходимость интегрированного метода борьбы с ними.

Одной из важнейших биологических особенностей этих болезней является длительное, иногда пожизненное сохранение паразитов в организме переболевших животных. Такие животные являются основным резервуаром инвазии в природе и постоянно заражают членистоногих переносчиков, в организме которых паразиты выживают и передаются трансфазно, т.е. по ходу метаморфоза – от личинки к нимфе, от нимфы к имаго. Кроме того, для некоторых видов иксодид характерна трансовариальная передача кровепаразитов, т.е. возбудитель болезни может передаваться через отложенные самками клещей яйца следующим генерациям до 50-57 поколений (срок наблюдения). Отсюда ясны роль и важность своевременной и надежной диагностики кровепаразитозов в комплексе мер борьбы с ними, особенно с учетом того, что на сегодняшний день разработаны достаточно эффективные методы и средства стерилизации организма животных от этих паразитов.

Существующие методы диагностики кровепаразитарных болезней несовершенны, малопроизводительны, трудоемки и требуют высокой квалификации персонала, что затрудняет широкое внедрение их в практику. Они основаны на разнообразных подходах, включающих как непосредственное выявление паразитов на различных стадиях развития (прямые методы, среди которых доминирует микроскопия мазков), так и регистрацию ряда изменений в пораженном организме, в той или иной мере специфичных для какого-либо возбудителя (косвенные методы, среди которых преобладают иммуносерологические). Среди последних методов наибольшее распространение получили реакция связывания комплемента (РСК), реакция преципитации в геле (РП-гель), непрямая реакция иммунофлюоресценции (НРИФ).

Вместе с тем, вышеперечисленные методы обладают рядом недостатков: не всегда отражают интенсивность инвазии, например, при исследовании иммунодепрессивных животных могут давать ложноотрицательные результаты, вследствие инерционности антителогенеза, а в случае, когда антитела могут длительное время выявляться и у переболевших животных, освободившихся от паразитов – ложноположительные результаты.

Снять эти ограничения мог бы метод, выявляющий самого паразита. Широко применяемая в практике для этих целей микроскопия окрашенных мазков крови малопроизводительна, ее результаты часто бывают неверными из-за трудностей дифференциации кровепаразитов от включений другой природы (тельца Жолли) и артефактов. Что касается микроскопической диагностики, то чрезвычайно важно знать морфологию каждого вида возбудителя, ибо морфологические признаки являются одним из основных критериев для определения вида возбудителя, однако в ряде случаев их бывает недостаточно.

Затруднения в морфологической дифференциальной диагностике возбудителей кровепаразитарных болезней животных возникают потому, что многие из них обладают значительным полиморфизмом и нередко разные виды паразитов не только у одних видов животных, но у разных видов имеют одинаковых по форме и даже по размерам возбудителей.

Необходимо обращать внимание на характерные формы, встречающиеся у отдельных видов возбудителей, которые обнаруживаются обычно в меньшем количестве. Кроме того, зачастую ветеринарные специалисты, не имеющие большого опыта и усидчивости при микроскопии мазков, когда необходимо просмотреть 200-500 полей зрения микроскопа, (п.з.) могут допустить ошибки, приняв за кровепаразитов различные артефакты.

Однако с учетом того, что переболевшие животные довольно долго, а при некоторых пироплазмидозах всю жизнь являются носителями возбудителя, обнаружение единичных паразитов в препаратах из крови не дает основания для диагноза болезни; в этом случае необходим учет всего комплекса диагностических приемов. Специалисты также должны иметь в виду наличие одновременно двух и более возбудителей или наслоение одного паразита на другого, то есть существование смешанных инвазий. Игнорирование этих условий нередко приводило к ошибкам в постановке диагноза, а, следовательно, и в осуществлении эффективных мер борьбы.

Этот комплекс включает: микроскопические исследования препаратов из крови и внутренних органов павших животных на предмет обнаружения возбудителей, эпизоотологические данные (сезонность, наличие и активность переносчика, тип очага и др.), течение болезни и симптомокомплекс, патологоанатомическую картину и др.

Важное значение в диагностике кровепаразитозов имеет также и регистрация ряда изменений в пораженном организме в той или иной мере специфичных для какого-либо возбудителя (косвенные методы, среди которых преобладают иммуносерологические). Среди последних методов наибольшее распространение получили реакция связывания комплемента (РСК), реакция преципитации в геле (РП-гель), непрямая реакция иммунофлюоресценции (НРИФ). Вместе с тем, вышеперечисленные методы обладают рядом недостатков - не всегда отражают интенсивность инвазии, например, при исследовании иммунодепрессивных животных могут давать ложноотрицательные результаты, вследствие инерционности антителогенеза; и в случае, когда антитела могут длительное время выявляться и у переболевших животных, освободившихся от паразитов, тем самым, давая ложноположительные результаты. Этим проблемам также уделено незначительное место в литературных источниках и в практической ветеринарии.

Альтернативный подход заключается в разработке иммунологического метода, позволяющего выявить самого паразита в паразитосодержащем материале. Этот подход ранее не развивался, так как широко применяемые тесты (РСК, РП-гель, НРИФ) из-за недостаточной чувствительности не отвечали предъявляемым требованиям. С разработкой в последние годы высокочувствительных и относительно простых в постановке методов РНГА и ИФА стало возможным и конструирование антигенрегистрирующих иммунологических тестов. Проблема упирается в отсутствие достаточного количества антигенов.

Традиционные пути получения антигена, увеличения его выхода из паразитосодержащего материала - крови экспериментально зараженных животных, повышения его активности представляются малоперспективными, сопряжены со многими техническими и финансовыми трудностями, невозможностью постоянного поддержания высокой паразитемии у животных, опасностью распространения инвазии от экспериментально зараженных животных через кровососущих членистоногих – насекомых и клещей, опасностью появления новых неблагополучных по кровепаразитозам очагов.

Зарубежные авторы считают, что проблема дефицита антигена и наработки его в достаточном для нужд практики количестве может быть решена и с использованием генноинженерных и иммунологических подходов – введения антигенспецифических фрагментов ДНК- паразита в микробные или дрожжевые клетки с последующим культивированием на питательных средах и сбором экспрессированного введенным отрезком ДНК антигеноактивного биополимера; использованием антиидиотипических антител в качестве антигена для целей диагностики.

С учетом изложенного видно, что в настоящее время в ветеринарии, в иммунологии практически не решены вопросы уточнения распространенности кровепаразитарных заболеваний на юговостоке Казахстана с учетом изменившихся хозяйственных условий, не изучен антигенный спектр возбудителей пироплазмоза, бабезиоза, тейлериоза, нутталиоза, анаплазмоза, трипаносомоза, не отработаны методы получения активных паразитспецифических антисывороток и антиидиотипических антител, не решены проблемы конструирования и внедрения в практику диагностикумов и антигенвыявляющих иммунологических тестов для индикации группы кровепаразитарных болезИзвестия Национальной Академии наук Республики Казахстан ней, не отработана методология получения безопасных в экологическом и ветеринарном плане диагностикумов при кровепаразитозах животных.

Цель исследований: сконструировать и предложить практике диагностические тест-системы при кровепаразитарных болезнях на основе использования «феномена антиидиотипии».

Методы исследований. Использованы: метод экспериментального заражения животных кровепаразитами; спленэктомия и иммунодепрессанты с целью увеличения паразитарной массы;

метод Н.И.Степановой (1971) для приготовления антигенов из крови [7,8]; иммунизация и гипериммунизация кроликов по Fey et all. (1986) в нашей модификации с целью получения идиотипов и антиидиотипов [9]; серологические тесты РСК, РНГА и ИФА.

Результаты. На основании проведенных многократных исследований предлагается технологический процесс приготовления диагностикумов при ряде кровепаразитарных болезней на основе использования «феномена антиидиотипии», который защищен охранными документами РК и на который МСХ РК утверждена нормативно-техническая документация, разработаны стандарты.

Принципиальные отличия наших исследований и технологического процесса приготовления диагностикумов на основе «феномена антиидиотипии» для выявления кровепаразитозов животных заключаются в том, что нами выбраны в качестве моделей объекты, ранее не исследованные для получения антиидиотипов, объекты, приготовление антигенов для которых из нативной крови сопряжены с большими производственными и финансовыми трудностями, с огромной потенциальной опасностью распространения этих инвазий от экспериментально зараженных животныхдоноров через кровососущих членистоногих.

Предложенный нами технологический процесс приготовления антиидиотипических диагностикумов значительно снижает себестоимость целевого продукта, не представляет собой особой сложности и позволяет приготовить диагностикумы, не уступающие по своей специфичности и активности нативным антигенам, приготовленным по ранее запатентованным способам из инвазированной кровепаразитами крови (Таблица 1).

Таблица 1. Технологический процесс приготовления диагностикумов на основе антиидиотипии

–  –  –

5 Тотальное обескровливание животных, получение инвазированной крови 6 Приготовление корпускулярных антигенов из инвазированной крови 7 Приготовление растворимых антигенов из инвазированной крови 8 Подбор лабораторных животных для наработки идиотипов 9 Иммунизация лабораторных животных с целью наработки идиотипов 10 Получение крови от иммунизированных лабораторных животных 11 Сорбция идиотипических антител 12 Элюция и концентрация идиотипических антител 13 Иммунизация лабораторных животных для наработки антиидиотипов 14 Получение крови от иммунизированных лабораторных животных 15 Сорбция антиидиотипических антител 16 Элюция и концентрация антиидиотипических антител 17 Выделение гамма-глобулина из антиидиотипических антител 18 Расфасовка, сублимационная сушка, упаковка Разработанные диагностикумы из антиидиотипических антител были адаптированы для диагностики кровепаразитозов животных в серологических тестах: РСК, РНГА и ИФА с заведомо отрицательными, полученными от молодняка текущего года сыворотками и заведомо положительными сыворотками, полученными от экспериментально зараженных тем или иным кровепаразитозом животных.

РСК проводили по общепринятой методике, титр комплемента был 1:80, сыворотки брали в разведении 1:5, антиидиотип, используемый в качестве диагностикума титровали от 1:10 до 1:2560.

Данная реакция не дала информативных результатов и далее нами не использовалась.

Для постановки РНГА использовали эритроциты, приготовленные по методикам Фили и Вайнбаха, которые сенсибилизировали риванольным методом. Определяли оптимальные условия протекания реакции (Таблица 2).

Из таблицы 2 видно, что в РНГА все испытуемые антиидиотипические диагностикумы давали положительную реакцию в четыре креста при разведении сывороток до 1:320, а трипаносомные антиидиотипические антитела в разведении 1:160. Контрольные, т.е. отрицательные сыворотки, давали во всех случаях отрицательную реакцию.

Таблица 2. Результаты РНГА с антиидиотипическими антителами против различных кровепаразитов животных

–  –  –

Полученные нами антиидиотипические антитела апробировали в качестве диагностикумов при кровепаразитозах различной этиологии в современном тесте – иммуноферментном анализе (ИФА). Иммуноферментный анализ ставили по методике Voller et al. (1976) [10]. В качестве антигена использовали антиидиотипические антитела и гамма-глобулин, выделенный из антисывороток солевым методом, путем высаливания сульфатом аммония при 50% насыщении. Антигены разводили карбонатным буфером, рН 9,0. После введения антител плашки сенсибилизировали альбумином. Конъюгацию кроличьей антисыворотки проводили по методу Nakane P.K. et al. (1974) с пероксидазой из хрена Олайнского производства с показателем Rz 2,7 – 3,2 [11]. В качестве субстрата использовали субстрат, предложенный Abraham A. (1984) [12]. Субстрат готовили из смеси ортофенилендиамида и перекиси водорода на цитратном буфере, рН – 5,0. Для промывания полистироловых планшет использовали 0,01 М фосфатный буфер, рН 7,2 на физиологическом растворе, содержащий 0,5 г/л твин-80 (ТФБ). Учет реакции ИФА проводили визуально.

Результаты использования приготовленных антиидиотипических диагностикумов в ИФА приведен в таблице 3.

Из таблицы 3 видно, что анаплазменные антиидиотипические антитела давали положительный результат при разведении 1:640, остальные антитела: пироплазменные, нутталийные и трипаносомные давали реакцию на порядок ниже, т.е. при разведении 1:320.

Контрольные, т.е. отрицательные сыворотки, во всех исследованиях давали отрицательные результаты.

Таблица 3. Результаты ИФА с антиидиотипическими антителами при различных кровепаразитах животных Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан

–  –  –

1:1280 1:2560 1:5120

–  –  –

1:160 1:320 1:640 1:80

–  –  –

* Настоящая публикация сделана в рамках подпроекта, финансируемого в рамках СКГ, поддерживаемого Всемирным банком и Правительством РК. Заявления автора могут не отражать официальной позиции Всемирного банка и Правительства РК.

ЛИТЕРАТУРА

1. Балашов Ю.С. Кровососущие клещи – переносчики болезней человека и животных. Л., «Наука», 1967. 318 с.

2. Степанова Н.И., Казаков Н.А., Заблодский В.Т. и др. Протозойные болезни сельскохозяйственных животных.

– М., «Колос», 1982. – С.102-134.

3. Петешев В.М. Anaplasma ovis – возбудитель анаплазмоза овец в Казахстане: автореф. …канд. nti. Наук. – Алма – Ата, 1964. – 20 с.

4. Хван М.В., Шабдарбаева Г.С. Гемопаразитозы овец на юго – востоке Казахстана: Материалы III Всесоюзного Съезда паразитоценологов. – Киев, 1991. – С.172.

5. Сулейменов Т.Т. Некоторые иммунобиологические особенности Anaplasma ovis и совершенствование серодиагностики анаплазмоза: дисс. …канд. Биол. Наук. – Алма – Ата, 1986. – 101 с.

6. Раисова К.Т. Клещи – переносчики пироплазмидозов лошадей в различных зонах Казахстана //Тезисы докладов XI межреспубликанской научно – практической конференции молодых ученых и специалистов «Резервы увеличения производства и повышения качества сельскохозяйственной продукции». – Оренбург, 1992. – С.49 – 50.

7. Степанова Н.И. Иммунитет и серологическая диагностика анаплазмозов и тейлериозов рогатого скота: автореф. …докт. Биол. Наук. – М., 1971. 47 с.

8. Степанова Н.И. Методы приготовления антигена для диагностики кровепаразитарных болезней и изучения иммунологического состояния больных и переболевших животных. // Тр. Ин-та /ВИЭВ. 1970. Т.38.С.120.

9. Fey M., Pfietter H., Messerli I., Sturzenegger N., Crolimud F. Methods of Isolation, Purification and Quantitation of Bovine Immunoglobulins.//Ibl.Vet.Med.- 1976.-23.- P. 269-300.

10. Voller A., Huldt G., Thors G., Bоgvall Р. Enzyme immunosorbent assay for parasitic diseases. Trans – actions of the loyal society of tropical Medicine and Hygiene. – 1976. 70. – P.93 – 106.

11. Nakane P.K., Kawaoi A. Peroxidase-labelled ntibody: A new methods of conjugation.//J.Histohem.Cytohem.- 1974.Vol.22.-P.1084-1091.

12. Abrnham А. Rapid purification of avion influlnzy virus for use in enzyme – virus for use in enzyme – linked immunosorbent assay //Am. J. Yet., 1984, №5. – P.131 – 137.

13. Шабдарбаева Г.С. Способ получения антианаплазменного гамма-глобулина.//Предварительный патент РК №14076, 2004.

14. Сабаншиев М.С., Шабдарбаева Г.С., Сулейменов Т.Т., Ахметова Г.Д., Ахметсадыков Н.Н., Хусаинов Д.М.

Способ получения трипаносомозного антигена. //Предварительный патент РК №14421, 2004.

15. Шабдарбаева Г.С. Способ получения анаплазменного антигена. //Предварительный патент РК №14637, 2004.

16. Шабдарбаева Г.С., Ахметова Г.Д. Способ получения трипаносомозного диагностикума. //Предварительный патент РК №15386, 2005.

17. Шабдарбаева Г.С., Балгимбаева А.И. Способ получения антигена из пироплазмид. //Предварительный патент №17196, 2006.

18. Шабдарбаева Г.С., Балгимбаева А.И. Способ получения антипироплазменной сыворотки. //Предварительный патент №17203, 2006.

19. Шабдарбаева Г.С., Балгимбаева А.И. Способ получения антипироплазменного гамма-глобулина.

//Предварительный патент №17204, 2006.

20. Шабдарбаева Г.С., Балгимбаева А.И. Способ получения пироплазменного диагностикума. //Предварительный патент №17722, 2006.

21. Шабдарбаева Г.С., Ахметсадыков Н.Н., Иванов Н.П., Хусаинов Д.М. и др. Способ получения антипироплазменной сыворотки //Инновационный патент РК №22021, 2009.

22. Шабдарбаева Г.С., Ахметсадыков Н.Н., Иванов Н.П., Хусаинов Д.М. и др. Способ получения препарата для диагностики пироплазмоза.//Инновационный патент РК №22022, 2009.

23. Шабдарбаева Г.С., Ахметсадыков Н.Н., Иванов Н.П., Хусаинов Д.М. и др. Способ получения препарата для диагностики трипаносомоза.//Инновационный патент РК №22023, 2009.

24. Шабдарбаева Г.С., Ахметсадыков Н.Н., Иванов Н.П., Хусаинов Д.М. и др. Способ получения пироплазменного антигена.//Инновационный патент РК №22154, 2010.

–  –  –

Бкілодаты банкті аржыландыруымен ткізілген зерттеулерді нтижесі келтірілген.

антоышарлы аурулар тралы ысаша эпизоотологиялы мліметтер келтіріліп, аталан ауруларда шаан экономикалы, луіметтік жне экологиялы зияны крсетілген. Аталан ауруларда сапалы балау дістерді маызы келтіріліп, сол дістерді ндылыын, сапасы жоарлату ажеттігі аы айтылан.

Анаплазмоз, пироплазмоз, нутталиоз, трипаносомоз ауруларда «антиидиотипиялы феноменді» олдану нтижесінде диагностикумдарды жне оларды компоненттерін жасау дістерді жетілдіру жолдары келтірілген.

Жасалынан диагностикумдар комплемент байланыстыру реакцияда (КБР), тікелей емес гемагглютинация реакциясында (ТЕГАР) жне иммуноферменттік талдау реакцияда (ИФТ) зерттеліп жасы нтіже алынды.

Анаплазмоз, пироплазмоз, нутталиоз, трипаносомоз ауруларда «антиидиотипиялы феноменді» олданып диагностикумдарды шыыраты технологиялы процессі жан-жаты зерттеліп биотехнологиялы жне ветеринариялы салаа сынылды.

–  –  –

The Broughted material of the studies, called on within the framework of execution progect, budgeted Worldwide bank.

The data epizoothic studies will Presented on bladparazits disease. It Is Shown economic, social and ecological damage from transmissibles hematozoon’s of the diseases and value of the qualitative diagnostics them.

The Presented methods of the preparation diagnosticum’s and their component at hematozoon’s disease - anaplazmosis, piroplazmosis, nuttaliosis, trypaosomosis with use "phenomenon anti-idiotypes".

Prepared diagnosticum’s practised with good result in serologic reaction - a reaction of the collecting complement (RSK), in reactions indirect hemagglutination (TEGAR), in enzymatic analysis (IFA).

It Is Designed and offered biotechnologyc to industry and veterinary practical person technological process preparations diagnosticum’s at hematozoon’s disease - anaplazmosis, piroplazmosis, nuttaliosis, trypaosomosis.

Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан УДК: 619:616.981.49]:636.2:615.017 Г.К. ДЖАНАБЕКОВА

АМИНОКИСЛОТНЫЙ СОСТАВ ИММУНОГЛОБУЛИНА G2

СЫВОРОТКИ КРОВИ ТЕЛЯТ ДО И ПОСЛЕ ИММУНИЗАЦИИ

РАЗНЫМИ ВАКЦИНАМИ ПРОТИВ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА

(Казахский национальный аграрный университет, г. Алматы) Изучен аминокислотный состав иммуноглобулина G2 в сыворотке крови телят в норме и после иммунизации живой и убитой вакцинами против сальмонеллеза в сравнительном аспекте. Показано, что иммуноглобулин G2 состоит из 18 аминокислот. Качественный состав аминокислот после иммунизации остался без изменений, по количественному содержанию выявлено увеличение количества аланина, лизина, глутаминовой кислоты, глицина, пролина, треонина, гистидина и понижение уровня аргинина, аспарагиновой кислоты, метионина, тирозина, фениаланина и цистина.

Изучение аминокислотного состава, особенностей химической организации и установления первичной структуры белков необходимо, так как их биологическая активность и физикохимические свойства во многом обусловлены их первичной структурой. Наиболее важны исследования биологически активных белков–ферментов, гормонов и иммуноглобулинов, так как они помогают выяснению механизма их биологической активности, структурных особенностей, физикохимических и антигенных свойств [1].

Гамма-глобулиновая фракция сыворотки крови относится к группе биологически активных белков. Различными методами колоночной хроматографии из сыворотки крови обычно удается выделить три подфракции -глобулина, называемых G-, M- и А-глобулины. Наибольшей биологической активностью обладает G-глобулин (IgG), который составляет примерно 75% гаммаглобулиновой фракции [2].

Биологическая активность IgG объясняется тем, что он является главным носителем специфических антител, именно в этой фракции находится основная масса антител против вирусов и бактерий. Как известно, иммуноглобулин G в сыворотке крови сельскохозяйственных животных представлен в виде двух подклассов: IgG1 и IgG2 [3, 4]. IgG2 или гамма-глобулин–2 является одним из наиболее изученных белков сыворотки крови человека и животных. Впервые аминокислотный состав IgG2 человека и кролика изучен с помощью автоматического аминокислотного анализатора.

Работы многих исследователей посвящены в основном изучению свободных аминокислот сыворотки крови животных [5, 6], тогда как аминокислотный состав иммуноглобулинов животных в норме и при иммунизации мало изучен. В настоящее время изучение аминокислотного состава белков проводится с помощью высокочувствительных, точных и скоростных специальных приборов – автоматического аминокислотного анализа. Все они работают по ионообменному хроматографическому принципу, разработанному Wier R.C. et al. [7]. Окрашенные нингидрином аминокислоты регистрируются фотометрически при 570 нм, для пролина и оксипролина – при длине волны 440 нм.

Целью данного исследования явилось изучение аминокислотного состава IgG2 в сыворотке крови телят в норме и после иммунизации живой и убитой вакцинами в сравнительном аспекте.

Методы и результаты исследований Для проведения исследования были сформированы 2 группы телят: 1-я группа - телята, иммунизированные поливалентной живой вакциной из штаммов S. dublin, S. typhimurium и S. choleraesuis; 2-я группа - телята, иммунизированные формол-квасцовой вакциной.

IgG2 сыворотки крови телят, выделенный каприловой кислотой и очищенный колоночной хроматографией на ДЭАЭ-сефадексе А-50 типа средний, был подвергнут аминокислотному анализу на автоматическом аминокислотном анализаторе [8]. Триптофан определяли специальным опытом, так как он отличается высокой чувствительностью к кислотному гидролизу: разрушается в основном окислением кислородом воздуха за счет реакции с другими аминокислотами и углеводами, что практически делает невозможным количественное хроматографическое или хроматополярографическое его определение совместно с другими аминокислотами. Для определения триптофана обычно используется его способность давать окрашенные продукты при взаимодействии с различными альдегидами. На реакции триптофана с пара-диметиламинобензальдегидом основан один из наиболее хорошо зарекомендовавших себя методов определения триптофана. Количественное содержание триптофана во всех препаратах иммуноглобулинов определяли по методу Opienska-Blath J. et al. [9]. Аминокислота цистин во время кислотного гидролиза претерпевает различные изменения, что затрудняет его количественное определение. Определение проводили методом окисления, суть которого заключается в окислении белка при 0°С надмуравьинной кислотой, при этом 98 – 100% всего цистина превращается в цистеиновую кислоту, которая более устойчива к кислотному гидролизу и может быть определена на автоматическом аминокислотном анализаторе.

Результаты исследования показали, что иммуноглобулин G2 сыворотки крови телят состоит из 18 аминокислот. Наши результаты изучения аминокислотного анализа иммуноглобулинов G2 телят в норме согласуются с результатами исследований [10].

Данные количественного изучения аминокислотного состава IgG2 приведены на графиках 1 и

2. Из данных графиков видно, что у телят первой группы после иммунизации количественным изменениям подверглись не все аминокислоты (рисунок 1). Особенно выражены изменения в концентрации таких аминокислот, как лизин, глутаминовая кислота, аланин, глицин, пролин, треонин, гистидин. После иммунизации телят наблюдалось повышение содержания лизина на 23%, глутаминовой кислоты на 35%, глицина – на 27,5%, пролина – на 16,3%, треонина – на 11,8% и гистидина – на 4,5%. Особенно значительно увеличилось количество аминокислоты аланина – на 84,5%.

Количество аминокислот – аргинина, аспарагиновой кислоты, метионина, тирозина, фениаланина и цистина – отличается пониженным содержанием: 17%, 10,5%, 50,8%, 22,8%, 55,3% и 54,4% соответственно. Что касается остальных аминокислот, то особых изменений в их количественном соотношении до и после иммунизации не наблюдалось. У телят второй группы после иммунизации также имеются определенные изменения в аминокислотном составе этого белка (рисунок 2). Отмечено увеличение содержания аминокислот лизина на 17,3%, аргинина – в два раза, аспарагиновой кислоты – на 21,7%, треонина – на 4%, фенилаланина – на 28,1%, цистина – на 11,3%, триптофана – на 50,48%, гистидина – на 3,5%, пролина – на 11,7% и снижение количества аминокислот глутаминовой кислоты – на 7%, глицина – на 81,8%, аланина – на 57,8%, валина - на 2,7%, изолейцина – на 20,3%, лейцина – на 15,7%, тирозина – на 12%, серина – на 9,2%.

Рис. 1. Аминокислотный состав иммуноглобулина G2 в сыворотке крови телят, иммунизированных живой вакциной против сальмонеллеза Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан

–  –  –

Таким образом, в результате проведенных исследований установлено, что IgG2 сыворотки крови после иммунизации 1-й группы телят поливалентной живой вакциной из штаммов S. тyphimirium, choleraesuis и dublin, характеризуется повышенным содержанием аланина, лизина, глутаминовой кислоты, глицина, пролина, треонина, гистидина и пониженным содержанием аргинина, аспарагиновой кислоты, метионина, тирозина, фениаланина и цистина; аминокислотный состав IgG2 сыворотки крови телят 2-й группы характеризуется увеличением количества аргинина, аспарагиновой кислоты, лизина, фенилаланина, триптофана, цистина, пролина, треонина, гистидина и уменьшением уровня глицина, аланина, изолейцина, лейцина, тирозина, серина, глутаминовой кислоты, и валина. Из литературных источников известно, что аминокислота лизин укрепляет иммунную систему путем активной выработки антител, гормонов и ферментов; треонин необходим для синтеза иммуноглобулинов и антител; глутамин весьма важен как переносчик энергии для работы мукозных клеток тонкого кишечника и клеток иммунной системы; гистидин почти на 60% всасывается через кишечник, играет важную роль в метаболизме белков, в синтезе лейкоцитов и эритроцитов крови и гемоглобина. Увеличение содержания указанных аминокислот, по-видимому, связано с их биологическими свойствами.

№ 6. 2011 ЛИТЕРАТУРА

1. Porter R.R. Structural studies of immunoglobulins // Nobel lecture. Dec. 12. 1972. Stockholm, 1973. – P. 174-183.

2. Butler J.E., Maxwell C.F., Pierce C.S. et al. Studies on the relative synthesis and distribution of IgA and IgG1 in various tissues and bodi fluids of the cow // J. Immunol. – 1972. – V.109. – P. 38-46.

3. Williams M., Masewell A.G., Apooner R.L. Quantitative studies on bovine immunoglobulins normal plasma levels of IgG2, IgG1, IgM and IgA // Res. Vet. Sci. – 1975. – V.18. - №3. – P. 314-321.

4. Cuipps A.W., Husband A.J., Sciechitano R., Sheldrake R.F. Quantitation of sheep IgG1, IgG2, IgA, IgM and albumine by radioimmenoassay // Veter. Immun. Immunophatol. – 1985. – V.8. - №11. – P.137-140.

5. Edelman J.M. Antibody structure and molecular immunology // Nobel lecture. Dec.12. 1972: Stockholm, 1973.-P.147Moore S., Spakman D.H., Stein W.H. Chromatography of amino acids on sulfonated polystarine resins // Anal. Chem. – 1958. – V. 30. – P. 235-238.

7. Wier R.C., Porter R.R., Givol D. Comparison of the C-terminal amino acid sequence of two immunoglobulin IgG and IgG (T) // Nature. – 1966. – V.212. – P.205-206.

8. Жумашев Ж.Ж., Бабаев М.Б., Алимжанова Ш.С., Туганбекова М.А. Иммуноглобулины животных // Монография. Алматы, 1994. – С.3-16.

9. Opienska-Blath J., Charezinski M., Berbic H. Method of determination of tryptophan // Anal. Biochem. – 1963. – V.6.

– P. 69-71.

10. Туганбекова М.А. Аминокислотный состав и молекулярная масса иммуноглобулинов крупного рогатого скота // III конференция биохимиков Средней Азии и Казахстана. – Иммунология. Душанбе, 1981. – Т. 1. – С. 248.

–  –  –

Бзауларды сальмонеллезге арсы поливалентті вакцинамен иммундау нтижесінде тжірибелік бзаулардан алынан ан сарысуы рамындаы IgG2 амин ышылдарыны рамы зерттелді. IgG2 18 амино ышылдарынан тратындаы аныталды жне бзауларды S. typhimirium, S.choleraesuis, S.dublin штаммымен поливалентті тірі вакцинасымен иммундаланнан кейін, IgG2 рамындаы амин ышылдары ішінен: аланин, лизин, глутамин ышылыны, глицин, пролин, треонин жне гистидин млшері салыстырмалы кбейеді, ал керісінше, аргинин, аспарагин ышылы, метионин, тирозин, фениаланин жне цистин аминоышылдарны млшері тмендейді.

AMINO ACID STRUCTURE OF IMMUNOGLOBULINS G2 IN WHEY OF BLOOD OF CALFS BEFORE AND

AFTER IMMUNOLIZATION DIFFERENT VACCINES AGAINST SALMONELLOSIS

–  –  –

The article shown that as a result of studies on amino acid composition of the immunoglobulin G2 it was found that immunoglobulin G2 serum of calves is composed of 18 amino acids, and after immunization by polyvalent live vaccine strain S.

typhimirium, S.choleraesuis, and S.dublin, is characterized by a high content of lysine, alanine, threonine, histidine, glycine, proline and glutamic acid and low content of arginine, asparagine, methionine, thyrosine, phenyialanine and cistine.

Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан ОЖ 619: 612.017.1 Г.Д.ІЛГЕКБАЕВА, Б.К.ОТАРБАЕВ, К.ШЫНЫБАЕВ, М.Э.АМАНТАЕВА

САЙДУЛДИН РЕАКЦИЯСЫН ОЙ БРУЦЕЛЛЕЗІ КЕЗІНДЕ

НДІРІСТІК СЫНАТАН ТКІЗУ (аза лтты аграрлы университеті) Бруцеллезді балауды негізгі дісі серологиялы діс. Сиыр бруцеллезі кезінде кеінен олданыс тапан Сайдулдин реакциясы ндірістік жадайда ой бруцеллезін балау шін сынатан тіп, оны Алматы жне Амола облыстарындаы нтижелері келтірілген. Сайдулдин реакциясыны олданыстаы (АР, КБР, РБС) тесттерді суммарлы о нтижесінен ауыран малды арты крсететіні длелденген.

Бруцеллез зооантропонозды жпалы ауру. азіргі тада бруцеллезді негізгі эпидемиологиялы ошатары – Республикамызды басым кпшілік айматарында тіркелген.

Соы жылдары адам мен жануарларды бруцеллезге жалпы шалдыу дегейі лі де жоары 16,0%

- 17,8%, кейбір отбасында 3-7 адама дейін ауыран. Адам шін бруцеллез оздырушысыны негізгі бастауы ауруа шалдыан ой-ешкі болып табылады. Ауруды эпидемиялы ршуі осы жануарларды індеттік жадайына байланысты [1,2,3, 4].

Осыан байланысты бізді зерттеулерімізді масаты Сайдулдин реакциясын ойды бруцеллезі кезінде ндірістік сынатан ткізу болды.

Зерттеу нысандары мен дістері. Зерттеулер Алматы облысы Талар ауданды зертханасында, Амола облысы Ккшетау айматы ветеринариялы зертханасында жргізілді.

Зерттеу нтижелері. Алматы облысы Талар ауданы Панфилов селолы округінен барлыы ойды ан сарысуыны 478 сынамасы тексеріліп, КБР-да 1 ан сарысуы, СР-да 2 сынама бруцеллезге о нтиже берді. Жалпы алынан о нтижелер зерттелген ан сарысуыны 0,42 %-н рады. Кедала ауылды округі бойынша барлыы 939 ойды ан сарысуы бруцеллезге тексерілді. РБС-да 4 ан сарысуы о, КБР-да 1 о нтиже, СР-да 4 ан сарысуы о нтиже берді.

Сонымен, барлыы 4 сынамада о нтиже аныталып 0,42% рады (1-кесте).

Осы аудана арасты Тздыбастау ауылды округіні 134 ойды ан сарысуы бруцеллезге тексеріліп, РБС, АР жне КБР-да барлы ан сарысуы теріс нтиже беріп, ал СР-сы бойынша 1 сынамада о нтиже 0,7% аныталды.

Алматы асыл тымды мал зауытынан барлыы 400 ойды ан сарысуы тексеріліп, РБС-да 2 ой ан сарысуы, КБР-да 1 сынама, ал 3 реакция бойынша 1 сынама о нтиже беріп, СР-да 1 ауру ой аныталып 0,25% крсетті.

Сонымен, Алматы облысы Талар ауданы бойынша бруцеллезден сау емес шаруашылытардан барлыы 2260 ойды ан сарысуы бруцеллезге тексеріліп, РБС-да 6 сынама, AP-да 1 ан сарысуы о, КБР-да, 2 сынама о, ш реакцияны жиынты бойынша барлыы 3 сынама 0,30%, ал СР-сы бойынша 8 сынама о, барлыы 8 ан сарысуы о нтиже беріп, 0,35% рады.

Бруцеллезден сау шаруашылытардаы 527 ойды ан сарысулары аталан 4 реакцияда теріс нтиже берді.

Амола облысы бойынша тмендегідей нтижелер алынды. Зеренді ауданы Бла ауылды округінен 146 ойды ан сарысуы тексеріліп, РБС-да, АР-да жне КБР-да барлы сынамалар теріс нтиже крсетті. СР-да 2 ан сарысуында бруцеллезге о нтиже аныталып, ол 1,37 %-ды рады (2-кесте).

Зеренді ауданына арасты Кктерек ауылды округіні 190 ан сарысуы тексерілді. РБС, АР жне КБР-сы бойынша бруцеллезге ан сарысулары теріс нтиже саны СР-да 6 сынама о нтиже берді.

Зеренді ауданы Хортурен ауылды округінен барлыы 250 ан сарысуы РБС, АР жне КБРсы бойынша барлы сынамаларды бруцеллезге теріс нтижесі аныталып, СР-да 13 сынама о нтиже крсетті. О нтиже жалпы зерттеліп ан сарысуына шаанда 5,2%-н рады.

№ 6. 2011 1 кесте. Алматы облысы Талар ауданы бойынша ойды бруцеллезін серологиялы зерттеу нтижесі

–  –  –

% % % %

–  –  –

% % % %

–  –  –

№ 6. 2011 Кусенский ауылды округінен 114 ан сарысуы бруцеллезге РБС, АР жне КБР-да барлы сынамалар теріс нтиже крсетті.

Зеренді ауданы Зеренді ауылды округі бойынша 637 сынаманы бруцеллезге тексеріп, РБС, АР жне КБР-да ан сарысулары теріс нтиже крсетіп, СР-да 15 сынамада о нтиже аныталды.

Барлы реакциялар бойынша алынан о нтижелер 2,35%-ды рады.

Подлесненский ауылды округынан барлыы 156 ан сарысуы сынамасы бруцеллезге РБС, АР жне КБР-сы бойынша тексергенде теріс нтиже алынды, ал СР-да 6 сынама о нтиже крсетті.

Сейфуллин ауылды округінен барлыы 675 ан сарысуы бруцеллезге РБС, АР жне КБР-сы тексеріліп, PБC-да 3 о нтиже, ал AP-да, КБР-сы бойынша 17 сынамада о нтиже аныталды.

Сарызек ауылды округі бойынша 194 сынама РБС, АР жне КБР-сы бойынша бруцеллезге тексеріліп, 1 сынамада о нтиже аныталып, ал СР-сы бойынша 5 сынамада о нтиже аныталды. Реакцияларды орытындысы бойынша алынан 5 о нтиже барлы зерттелінген ан сарысуыны 2,5%-на сйкес келді.

Викторовка ауылды округінен барлыы 286 сынама бруцеллезге РБС, АР, КБР-сы арылы тексеріліп, КБР бойынша 2 ан сарысуы о нтиже берді. СР-сы бойынша бруцеллезге 6 сынамада о нтиже аныталды. Зерттеу нтижесі бойынша алынан о нтиже барлы зерттелген ан сарысуларыны 2,0 %-на сйкес келді.

Амола облысы бойынша бруцеллезден сау емес шаруашылытардан 2626 ой бруцеллезге тексеріліп, РБС-да 4 о нтиже 0,15%, КБР мен АР-да 1 сынама 0,51%, 3 реакцияны жиынты нтижесі бойынша 6 о нтиже 0,22%, ал СР-мен 70 сынама 2,6% рады.

Бруцеллезден сау шаруашылытардан келінген 1532 сынама 4 реакция бойынша (АР, КБР, РБС жне СР) тексеріліп, теріс нтиже аныталды.

ДЕБИЕТ

1. Иванов Н.П. Бруцеллез животных: методы и средства борьбы с ним // Алматы, 2002. - 351c.

2. Беклемишев Н.Д. Хронический латентный бруцеллез //Алма-Ата: «Наука». 1965. - 330 с.

3. Здрадовский П.Ф. Бруцеллез //М.:

- «Медгиз». - 1953. - 244 с.

4. Орлов Е.С. Бруцеллез овец //Автореф. дисс… докт.вет.наук. – Москва, 1954. - 21 с.

Испытание реакции Сайдулдина при бруцеллезе овец в производственных условиях

–  –  –

Основной метод диагностики бруцеллеза – серологический. Реакция Сайдулдина, широко используемая при бруцеллезе крупного рогатого скота, прошла производственное испытание при бруцеллезе овец в Алматинской и Акмолинской областях. Доказано, что показания РС превосходят суммарные положительные результаты общепринятых (РА, РСК, РБП) методов.

Experience of Saidouldin Test for diagnosis of Sheep Brucellosis by industrial conditions

–  –  –

The main diagnostic method of Brucellosis is serological. Saidouldin Test, wide using for diagnosis of Cattle Brucellosis, has get industrial trial for diagnosis of Sheep Brucellosis in Almaty and Akmola Oblasts. It was demonstrated, that Saidouldin Test is high sensitive than generally accepted (CFT, AT, RBT) reactions.

Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан УДК 619:619.995.132 Н.Б. САРСЕМБАЕВА, А.Е. ПАРИТОВА, А.Е. СЛЯМОВА

ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ ЭКСПЕРТИЗА

РЫБ ПРИ АНИЗАКИДОЗЕ

–  –  –

Раскрываются вопросы по ветеринрно-санитарной экспертизе рыб при анизакидозе. Нематоды семейства анизакид (Anisakidae) относятся к числу наиболее распространённых гельминтов. Взрослые формы и личиночные стадии Anisakis паразитируют в организме морских млекопитающих, птиц, рыб и рептилий, и только личиночные формы — в организме рыб и беспозвоночных. Работа выполнялась с 2010-2011 гг. в лаборатории кафедры «Ветсанэкспертизы и гигиены» Казахского Национального аграрного университета. При паразитологическом исследовании проб рыб нами выявлено наличие личинок Anisakis у трески в количестве от 1 до 63, в сельди - от 10 до 42, экстенсинвазированность рыбы гельминтами, в особенности в весенний период года достигает 100%. Установлено, что рыба при интенсивной инвазии (треска, сельдь — более 20;) отличается более низкими показателями качества, питательной (биологической) ценностью и значительно меньшей потребительской способностью. В настоящее время актуально изучение влияния личинок Anisakis не только на организм рыб, но и человека. Высокая заражённость рыб спиралевидными личинками Anisakis и промысловых беспозвоночных резко ухудшает их товарное качество, что приводит к значительным экономическим потерям.

Проблема качества рыбы и рыбной продукции с учетом режимов хранения и заражения гельминтами занимает одно из ведущих мест в структуре питания населения, что способствует постоянному совершен-ствованию апробации и внедрению в производство современных достижений аналитической химии и физики. Это позволит разрабатывать комплексные алгоритмы диагностики, ускоряющие процесс выбраковки некондиционной продукции. [1, 2] Нематоды семейства анизакид (Anisakidae) относятся к числу наиболее распространённых гельминтов. Взрослые формы и личиночные стадии Anisakis паразитируют в организме морских млекопитающих, птиц, рыб и рептилий, и только личиночные формы — в организме рыб и беспозво-ночных. Однако в последние десятилетия возникла проблема заражения людей гельминтами, в частности, нематодами родов Anisakis и Pseudoterranova, которое происходит в основном при употреблении человеком в пищу рыб или головоногих моллюсков, содержащих их живые личинки.

Заражению личинками Anisakis подвержен не только человек, но и ценные пушные звери при их искусственном выращивании и другие полез-ные животные при кормлении их свежей морской рыбой, содержащей личинки. [3, 4] Целью данной работы было проведение исследований по усовершенствованию ветеринарносанитарной экспертизы рыбы при зара-жении ее возбудителями анизакидоза, направленной на повышение качества и безопасности рыбной продукции.

Для достижения намеченной цели были поставлены следующие задачи:

1) провести органолептические исследования рыб, пораженных личинками анизакид;

2) провести лабораторно-диагностические исследования мышечной ткани и внутренних органов здоровой рыбы и пораженной личинками Anisakis.

Материалы и методы исследования. Работа выполнялась с 2010-2011 гг. в лаборатории кафедры «Ветсанэкспертизы и гигиены» Казахского Национального аграрного университета.

Для изучения распространения гельминтозов рыб служили образцы проб, собранные из рынков и супермаркетов города Алматы, а также привозная рыба из Уральска. Методами органолептического, биохи-мического, бактериологического и гельминтоскопического анализа были исследованы: треска, морской окунь поступавшие для продажи на рынки города Алматы, а также пробы рыб, отбиравшиеся на контрольные иссле-дования из рыбоводных хозяйств и водоемов Западно-Казахстанской области.

Исследования и отбор проб проводили согласно ВМУ «Ветеринарно-санитарная экспертиза продуктов животного происхождения», ГОСТа 7636-85 «Методы химического и микроскопического анализа», ГОСТа 7631-85 «Рыбы, морские млекопитающие, морские беспозвоночные и продукты их переработки. Правила приемки, органолептические методы оценки качества, методы отбора проб лабораторных испытаний».

Качество мяса рыб изучено с помощью органолептических методов ГОСТ 7631-85, при этом определяли внешний вид, осматривая кожные покровы и плавники, состояние слизи, ее количество и качество, особенности чешуи, глаз, рта, цвет жабр, а также внутренние органы и мышцы: их консистенцию, запах и прозрачность бульона. Обращали внимание на окраску, форму, рисунок и степень ослизнения жабр, структуру лепестков. Из биохимических и микробиологических показателей определяли: бак-териоскопию, ставили реакцию с сернокислой медью (CuSO4), на сероводород, пероксидазу, амино-аммиачный азот и число Несслера.

Результаты исследования. Полное гельминтологическое (ихтиопатологическое) вскрытие по методу К.И. Скрябина модифици-рованного применительно к рыбам В.А. Догелем – наиболее надежный метод, позволяющий нам произвести количественный и качественный учет всех гельминтов, которыми заражена рыба. Для этого использовали свежую живую рыбу. Определяли ее вид, взвешивали и измеряли для уточнения возраста. Проводили внешний осмотр рыбы, ее чешуи, кожи и плавников. Брали соскобы слизи с кожи, плавников и просматривали под микроскопом компрессорным методом. При вскрытии рыбы ее разрезали вдоль срединной линии, начиная от анального отверстия и кончая областью сердца. Стенку вырезали (обычно левый бок) так, чтобы хорошо видеть внутренние органы. Просмотр внутренних органов начинали с сердца вместе с сосудами, которые помещают в чашку Петри с добавлением физиологического раствора для пойкилотермных животных. Сердце вскрывали, а осадок микроскопировали.

Желудочно-кишечный тракт отпрепаровывали. Просматривали невооруженным глазом, а затем делали соскоб слизи и исследовали компрессорным методом отдельные участки.

Печень отпрепаровывали вместе с желчным пузырем, затем вынимали селезенку, жировую ткань, плавательный пузырь, почки, половые железы. С них сначала делали соскобы, а затем разрезали на кусочки и просматривали для исследования компрессорным методом.

Глаза вырезали маленькими (лучше изогнутыми) ножницами, затем на предметном стекле разрезали оболочки, освобождая, таким образом, хрусталик и стекловидное тело, отмечая западания глаз или пучеглазие, кровоизлияния, помутнение хрусталика и роговицы.

Нематод не окрашивали, а только просветляли неразведенной молочной кислотой. Для этого гельминт выдерживают в молочной кислоте от одного до семи дней в зависимости от его величины.

Органолептические показатели не являются основными показателями, подтверждающими доброкачественность рыбы.

–  –  –

Лишь химическими методами удается выявить такие вещества как аммиак, летучие жирные кислоты, сероводород. На более поздних стадиях гнилостной порчи появляются индол и скатол, и поэтому устанавливать их в начальной стадии порчи нет необходимости.

Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан

–  –  –

В рыбе (окунь), не инвазированной личинками Anisakis, содержание аммиака было до 30 мг/кг фарша, что свидетельствовало об отсутствии глубокого распада белков. Независимо от степени инвазии морских рыб личинками Anisakis, в мышечной ткани происходило накопление аммиака. Кроме того, при максимальной инвазии, по всей видимости, происходили как аэробный, так и анаэробный процессы глубокого распада белков мышечной ткани (треска и сельд). Реакция с сернокислой медью бульон из мяса рыб, свободных от гельминтов, прозрачный, жидкий, а бульон из мяса рыб, зараженных личинками анизакид, мутный, с образованием хлопьев с желеобразной консистенцией.

–  –  –

При проведении бактериологических исследований нами установлено, что в изучаемых пробах рыб количество мезофильных аэробных и факуль-тативно-анаэробных микроорганизмов (КМАФАнМ) и колониеобразующие единицы (КОЕ) в 1г рыбного сырья (1*1Е5), Staphylococcus aureus в 0,01г рыбного сырья не обнаружены. Патогенные микроорганизмы, в т.ч. сальмонеллы, в 25г рыбного сырья не обнаружены. Бактерии группы кишечной палочки (БГКП) в 0,001г рыбного сырья не обнаружены, V. Parahemolyticus 1г рыбного сырья не обнаружены.

Следовательно, в исследуемых пробах рыб не были обнаружены патогенные микроорганизмы. Однако по физико-химическим показателям и интенсивной инвазии установлено, что рыба непригодна в пищу и ее следует направить на техническую утилизацию.

Обсуждение результатов

1. При паразитологическом исследовании проб рыб нами выявлено наличие личинок Anisakis у трески в количестве от 1 до 63, в сельди - от 10 до 42, экстенсинвазированность рыбы гельминтами, в особенности в весенний период года, достигает 100%.

№ 6. 2011

2. Установлено, что рыба при интенсивной инвазии (треска, сельдь — более 20;) отличается более низкими показателями качества, питательной (биологической) ценностью и значительно меньшей потребительской способностью.

Выводы В настоящее время актуально изучение влияния личинок Anisakis не только на организм рыб, но и человека. Высокая заражённость рыб спиралевидными личинками Anisakis и промысловых беспозвоночных резко ухудшают их товарное качество, что приводит к значительным экономическим потерям. Заражению личинками Anisakis подвержены не только человек, но и ценные пушные звери при искусственном выращивании и другие полезные животные, в корм которых используют свежую морскую рыбу.

ЛИТЕРАТУРА

1. Багров А.А. Анизакидные личинки (род Anisakis) рыб Тихого океана: автореф. дисс. канд. биол. наук // А.А.

Багров М, 1985. 24 с.

2. Гаевская А.В. Анизакидные нематоды и заболевания, вызываемые ими у животных и человека // А.В. Гаевская. Севастополь: ЭКОИС-Гидрофизика, 2005. 223 с.

3. Довгалев А.С. Обеспечение качества и безопасности рыбной продукции /А.С. Довгалев, Н.Т. Понтюшенко, В.П. Сергиев и др. // Ветеринария. 1998. №1. С. 7-12.

4. Abollo Е. Anisakis infestation in marine fish and cephalopods from Galician waters: an updated perspective / Е.

Abollo, C. Gestal, S. Pascual // Parasitol. Res. 200 Ib. №87. P. 492-499.

АНИЗАКИДОЗ АУРУЫ КЕЗІНДЕ БАЛЫТЫ ВЕТЕРИНАРИЯЛЫ-САНИТАРИЯЛЫ САРАПТАУЫ

–  –  –

Маалада гельминттермен заымдалєан балы етіні сапасын ветеринариялы-санитариялы трыдан баалау, яни органолептикалы, зертханалы дістермен зерттеп игеру крсетілген. Anisakis гельминттерімен заымдалан балытарды мшелері гельминтологиялы Догель дісімен жарып-сойып аралды.

–  –  –

The article describes methods of organoleptic and laboratory studies of fish meat infected by larvae Anisakis. The article presents the results of the examination of fish infected with helminths by helminthological method named in honor of Dogiel.

Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан УДК 619.616.993.193.636.7 Т.Т. СУЛЕЙМЕНОВ, Г.Д. АХМЕТОВА

–  –  –

Изучена степень распространения и динамики сезонности пироплазмоза крупного рогатого скота. Определен видовой состав клещей-переносчиков.

В условиях Южно-Казахстанской и Алматинской области пироплазмоз крупного рогатого скота часто протекает в смешанной форме с тейлериозом.

Смешанная форма пироплазмоза и тейлериоза протекает более тяжело, чем спонтанно инвазированные только одним видом возбудителя.

Вопросы лечения пироплазмоза КРС до сих пор остаются дискуссионными. Анализ литературных данных показывает, что в различных географических зонах одни и те же химиопрепараты, применяемые для лечения, дают различные результаты. К сожалению, в мире до сих пор не создано ни одного препарата, оказывающего губительное действие на возбудителя. Всё это выдвигает задачу разработать такую систему лечебных мероприятий, которая могла бы обеспечить стойкие результаты в различных случаях и стадиях заболеваний.

Учёными Казахстана (Н.П. Орлов, И.И. Карпухин, М.В. Хван и др.) были испытаны при пироплазмозе КРС пироплазмин, гемоспоридин, атоксил, беренил, антрицид, сульфантрол, наганин и др. Как отмечает Н.П.Орлов, (1963) ни один из них сам по себе не даёт удовлетворительных результатов, если одновременно не применять патогенетическое лечение.

Крайнее разнообразие пироплазмидозов обуславливается наличием различных видов иксодовых клещей, имеющих широкий ареал распространения. В нашей стране пироплазмоз крупного рогатого скота и пироплазмидозы животных распространены преимущественно на юге Казахстана (Южно-Казахстанская, Кызылординская и Жамбылская области). Следует отметить, что на юговостоке страны установлены также «незональные» очаги пироплазмоза крупного рогатого скота. В Алматинской области самым неблагополучным пироплазмидозным массивом является вся Жаркентская равнина, часть территории, граничащая с Китаем, и непосредственно примыкающая к нему предгорная зона.

Указанная выше часть территории Панфиловского района является эпизоотологической по пироплазмидозам лошадей и по пироплазмозу крупного рогатого скота.

По данным ветеринарной статистики, в 60-70-е годы прошлого столетия наибольший экономический ущерб в этом регионе наносил пироплазмоз крупного рогатого скота.

Для выяснения фактической ситуации по пироплазмозу крупного рогатого скота в Жаркентской равнине в 2005 году нами было проведено эпизоотологическое обследование животных.

На первом этапе работ мы сосредоточили внимание на изучении степени распространения и динамики сезонности пироплазмоза крупного рогатого скота, на выяснении видового состава клещей-переносчиков.

Анализ ветеринарной отчетности показал, что в Панфиловском районе Алматинской области в течение ряда лет в виде энзоотии регистрируется пироплазмоз крупного рогатого скота.

По данным райветстанции в 2002 г. заболело пироплазмозом - 12, в 2003 г. - 9 и в 2005 г. - 5 голов крупного рогатого скота.

В 2005 году в II половине июня нами проведены диагностические исследования крупного рогатого скота на пироплазмоз в местности «Сарпулдак», «Бирлик» и «Коктал». Всего исследовано клинически и частично микроскопией мазков крови 169 голов крупного рогатого скота. Выявлено 3 больных животных с клиникой пироплазмоза. От больных и здоровых животных собрано 163 экземпляра иксодовых клещей. При определении их до вида было установлено, что 51.5% из них составляют клещи рода Гиаломма, 28.3% рода Boophilus и 20,2% рода Рипицефалюс.

№ 6. 2011 Период паразитирования половозрелых форм клещей-переносчиков длится с апреля по октябрь, с пиком в мае. Вспышки пироплазмоза крупного рогатого скота полностью совпадали со сроком массового паразитирования клещей рода Гиаломма с учетом инкубационного периода инвазии.

Эпизоотологический анализ пироплазмозной ситуации показал, что в Жаркентской равнине пироплазмоз крупного рогатого скота регистрируется в единичных случаях и отмечается низкая степень зараженности клещей-переносчиков.

Таким образом, полученные нами результаты исследований позволяют считать, что Жаркентская равнина Алматинской области в отношении пироплазмоза крупного рогатого скота является латентной, значительная часть территории района является угрожаемой и неблагополучной.

Для стабилизации очагов инвазии считаем, что противоклещевые мероприятия необходимо осуществлять в этом районе ежегодно с марта по ноябрь месяцы.

Пироплазмидозы крупного рогатого скота в Казахстане значительно распространены в южных регионах. Особенно неблагополучна по пироплазмозу крупного рогатого скота ЮжноКазахстанская область.

Большая часть территории Южно-Казахстанской области характеризуется субтропическим климатом и чрезвычайным разнообразием природно-хозяйственных условий, что способствует созданию сложной эпизоотической ситуации по пироплазмозу крупного рогатого скота. По данным И.И.Тутушина (1979). Д.Т.Досжанова. З.В. Кущенко. В.Т.Яременко (1987) и др. пункты, неблагополучные по пироплазмозу, расположены в межгорных низменностях, характеризующихся умеренно холодной зимой и жарким продолжительным летом. Сезонность пироплазмоза связана с нападением клещей рода Гиаломма.

Основной сезон заболевания - летние месяцы (июнь, июль и первая половина августа). Они также сообщают, что пироплазмозом болеет, как правило, молодняк до 1,5-летнего возраста. По данным ветеринарной статистики, в неблагополучных по пироплазмозу хозяйствах ЮжноКазахстанской и Кызылординской областей в 70-80-е годы ежегодно пироплазмозом болели около 8-9 тысяч голов крупного рогатого скота.

В связи с переходом нашей страны на новую рыночную форму хозяйствования основная часть поголовья скота была передана в частные руки. Созданы мелкие фермерские и крестьянские хозяйства. В связи с этим изменилось количество поголовья скота и соотношение клещейпереносчиков. Все это привело к изменению эпизоотической ситуации по пироплазмозу крупного рогатого скота в современных условиях.

Нами проведены диагностические исследования крупного рогатого скота на пироплазмоз в Сайрамском районе Южно-Казахстанской области. В селе Акбулак исследовано клиническими методами и частично микроскопией мазков 1214 голов крупного рогатого скота. При этом было выявлено 14 больных животных с клиникой пироплазмоза. В том числе у 9 коров 3-4-летнего возраста наблюдали острое течение пироплазмоза. От больных и здоровых животных было собрано 127 экземпляров иксодовых клещей. В лаборатории университета при определении их до вида было установлено, что 21.3% из них составляли клеши рода Гиаломма. Дальнейшие исследования этих клещей (ксенодиагностика) показали, что зараженность их пироплазмами составила 27%.

Из анамнестических данных стало известно, что в 1970-1980 годы Сайрамские горные выпасы в летнее время использовались как отгонные пастбища для профилактики пироплазмоза крупного рогатого скота. Считалось, что на горных пастбищах животные не болеют пироплазмозом, хотя там имеются клещи-переносчики (М.И.Тутушин, 1979). Но по сведениям ветеринарных работников Сайрамского района стало известно, что за последние 3 года ими зарегистрированы на горных пастбищах 4 эпизоотические вспышки пироплазмоза.

На этом основании они считают, что благополучная по пироплазмозу зона горных выпасов постепенно превращается в неблагополучную.

В начале июля месяца 2005 г. нами было исследовано на пироплазмоз 32 головы крупного рогатого скота, находящиеся на горных выпасах. При этом с высокой температурой и увеличением лимфатических узлов была выявлена 1 корова З-летнего возраста (клиника пироплазмоз). От больного и здоровых животных было собрано 42 экземпляра иксодовых клещей. При определении их до вида было установлено, что 21 экземпляр из них составляют клещи рода Гиаломма (переносчики пироплазмоза).

Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан При вскрытии этих клещей в слюнных железах у 33-х были обнаружены пироплазмозы (около 40%).

Таким образом, полученные нами данные показывали высокую инвазированность иксодовых клещей пироплазмами в степных и горных зонах Сайрамского района Южно-Казахстанской области.

В результате анализа эпизоотической ситуации пироплазмоза в этой зоне установлено, что это заболевание крупного рогатого скота имеет тенденцию к дальнейшему распространению.

Аналогичные эпизоотологические данные получили мы при обследовании животных и клещей-переносчиков в степной зоне Южно-Казахстанской области.

В 2002 году в августе месяце нами были проведены диагностические исследования животных на пироплазмоз в Акбулакском кооперативном хозяйстве Сайрамского района ЮжноКазахстанской области.

Анамнестические и эпизоотологические обследования хозяйств показали, что с начала года из 71 голов молодняка заболело пироплазмозом 4 головы, а из 41 телят заболело 23 головы. Кроме того, нами был изучен видовой состав иксодовых клещей и их зараженность пироплазмами.

От 48 животных было собрано 313 экземпляров клещей, из которых H.anatolicum составляли 54,6%. H.detritum - 34,2%. Зараженность их пироплазмами составляла в среднем 23%.

В результате проведенных исследований было установлено, что основными переносчиками пироплазмоза на юге и юго-востоке страны являются клещи рода Гиаломма.

Период паразитирования половозрелых форм клещей-переносчиков длится с апреля по октябрь, с пиком в июне. Вспышки пироплазмоза крупного рогатого скота полностью совпадали с массовым паразитированием на животных клещей рода Гиаломма.

Сезонность пироплазмоза связана со сроком нападения клещей-переносчиков в фазе, передающей инвазию. Наибольшее эпизоотологическое значение имеют на юге Казахстана клещи H.detritum.H.scupense и H.anatolicum. Зимующий на скоте клещ H.scupense иногда передает пироплазмоз в зимне-весенние периоды года.

Пироплазмоз крупного рогатого скота в Сайрамском районе появляется в начале мая и протекает по-разному - или очень тяжело, с высоким процентом смертности, или в виде бессимптомного тейлерионосительства. Как правило, местные взрослые животные болеют гораздо легче, чем молодняк или привозные. Это. видимо, связано с активностью нападения клещей H.detritum, H.anatolicum, которые являются основными переносчиками пироплазмоза.

Далее нами проводились работы по изучению эпизоотической ситуации пироплазмоза в Ордабасинском районе Южно-Казахстанской области.

Эпизоотологический анализ пироплазмозной ситуации показал, что количество больных животных в этом регионе с каждым годом возрастает.

Ниже в таблицах 1, 2 приводим данные заболеваемости крупного рогатого скота пироплазмозом по половозрастным группам в населенных пунктах в с. Кемер, в пос. Жанаталап.

Таблица 1. Сравнительные данные о заболеваемости крупного рогатого скота пироплазмозом по половозрастным группам на 2004-2005 гг.

в поселке «Кемер»

–  –  –

Данные из таблиц 1 и 2 показывают, что пироплазмозом болеют, в основном, телята текущего года рождения и нетели, бычки от I до 2-лстнсго возраста. Сравнительно высок падеж среди телят. Значительно возросло количество больных животных. Так, если в поселке "Жанаталап" в 2003 году из1332 голов крупного рогатого скота заболело пироплазмозом всего 284, то за 2,5 месяца 2005 года заболеваемость скота составила 15,8%.

В 2005 году в начале июля нами проведены диагностические исследования крупного рогатого скота на пироплазмоз в указанных населенных пунктах. Всего исследовано клиническим методом и частично микроскопией 473 головы крупного рогатого скота. При этом было выявлено 73 больных животных с клиникой пироплазмоза.

При исследовании этих животных (473 голов) на заклещеванность пораженность их иксодовыми клещами составила 100%. Интенсивность заражения в среднем составила 15-28 клещей па I животное. От больных и условно здоровых животных было собрано 285 экз. иксодовых клещей. В лаборатории университета при определении их до вида было установлено, что 79.5% из них составляют клещи Hyalomma detritum. Hyalomma anatolicum и H.scupense-потенциальные переносчики пироплазмоза.

Дальнейшие исследования этих клещей (ксенодиагностика) показали, что зараженность их пироплазмами составляет 32%.

Таким образом, полученные нами данные свидетельствуют о высокой инвазированности животных и клешей пироплазмами в степной зоне.

Эпизоотическая ситуация кровопаразитарных заболеваний на огромной территории юга Казахстана с разнообразными природно-климатическими условиями не является стабильной. Голодная степь и равнинные районы центральной подзоны области являются одной из важнейших пироилазмидозных зон. По характеру эпизоотии пироплазмоза и франсайеллеза исследователи различают 3 пироплазмидозные зоны. Территории Сарыагашского и Шардаринского районов относятся к зоне, неблагополучной по всем трем кровопаразитам.

Данные местных ветеринарных работников показали, что энзоотии тейлериоза и пироплазмоза крупного рогатого скота в степных равнинных зонах юга Казахстана наблюдаются, в основном, с мая по сентябрь, наибольшее количество заболеваний регистрируется в июне и августе, а затем количество больных резко сокращается, что объясняется циклом развития основных переносчиков возбудителей пироплазмоза и тейлериоза - иксодовых клещей H.detritum. H.analolicum и B.calcaratus.

Исследования, проведенные в предыдущие годы, показали, что в период энзоотических вспышек пироплазмидозов крупного рогатого скота в хозяйствах равнинной зоны регистрируется смешанное паразитирование в крови больных животных нескольких возбудителей Piroplasma bigeminum. Theileria annulata и Ana-plasma marginale.

Количественное соотношение укзанных паразитов меняется в зависимости от сезона года и зональных условий, что отражается на степени тяжести переболевания животных кровепаразитозами.

В связи с этим перед нами стояла задача уточнить эпизоотическую ситуацию пироплазмоза крупного рогатого скота в условиях Сарыагашского района Южно-Казахстанской области.

В Сарыагашском районе в конце апреля месяца 2006 года нами было исследовано на пироплазмоз 476 голов крупного рогатого скота, в том числе 82 теленка. При этом клинически больных пироплазмозом животных не было выявлено. При исследовании этих животных на заклещеванность 206 животных оказались заклещеванными. От этих животных было собрано 179 клещей, Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан относящихся к роду Гиаломма. В лаборатории университета было проведено их вскрытие и микроскопическим методом исследованы мазки слюнных желез, после окрашивания их методом Романовского-Гимза.

Из 124 мазков из слюнных желез паразиты были обнаружены в 118 случаях, т.е. 95.5% клещей оказались зараженными пироплазмозами.

Анализ ветеринарной отчетности района показал, что в этом регионе у коров заболевание пироплазмозом регистрируется во второй половине мая и июне, а у молодняка - в июне-июле.

Анализ материалов по распространению пироплазмоза крупного рогатого скота в юговосточной и южной зонах республики дает возможность выделить следующие типы пироплазмозных очагов и их приуроченность:

- пункты эпизоотические, в которых имеется значительное количество клещей-переносчиков с зараженностью пироплазмозами до 35%, ежегодно заболевает как привозной, так и местный крупный рогатый скот до 10%. Эпизоотические очаги расположены в степных и голодно-степных зонах в Южно-Казахстанской области;

- пункты (очаги) энзоотические, степень заклещевания крупного рогатого скота более низкая со слабой степенью зараженности пироплазмозами. В таких очагах заболевает обычно небольшое количество животных, и они расположены в юго-восточной зоне Алматинской области и в горностепных зонах Южно-Казахстанской.

Можно сделать общий вывод, что на характер сезонной динамики пироплазмоза крупного рогатого скота оказывают влияние зональные климатические условия (в основном, температура) и наличие разного типа пастбищ.

Пироплазмоз крупного рогатого скота имеет значительное распространение в степных зонах Южно-Казахстанской области.

Обобщая материалы по изучению эпизоотологии пироплазмоза крупного рогатого скота в Южно-Казахстанской области, мы считаем, что в эпизоотических зонах необходимо проводить плановую борьбу с клещами-переносчиками на животных, путем систематических обработок их различными формами акарицидов.

ЛИТЕРАТУРА

1. Тутушин.И.И Горные выпаса как метод профилактики пироплазмоза крупного рогатого скота // Материалы республиканского семинара по борьбе с паразитарными болезнями сельскохозяйственных животных, посвященного 100летию академика К.И.Скрябина Алматы. 1979. С. 181-184.

2. Досжанов Д. Т., Кущенко З.В., Яременко ВТ. Опыт борьбы с пироплазмидозами крупного рогатого скота в хозяйствах Чимкентской области // Тр.КазНИВИ «Вопросы ветеринарной паразитологии в Казахстане». Алматы. 1987. 98РІ АРА ПИРОПЛАЗМОЗЫНЫ ТАРАЛУ ЕРЕКШЕЛІКТЕРІ

–  –  –

Маалада Отстік-азастан жне Алматы облысында ірі ара малыны пироплазмоз жне тейлериозбен аралас трде кездесетіні аныталды.Пироплазмозбен,тейлерозды аралас трі те ауыр трде байалады,баса жеке трде заымдалан оздырыштарды тріне араанда.

PARTICULARITIES Of THE SPREADING PIROPLASMOSIS INTO LARGE PIECES HORNED LIVE-STOCK

–  –  –

In the South Kazakhstan and Almaty oblast piroplasmosis of cattle often occurs in mixed form with theileriosis. Mixed form of piroplasmosis and theileriosis more than spontaneousiy infected with only one type of pathogen.

№ 6. 2011 УДК: 579. (66+001.57 + 047.64.042) + 579,6 Ж.К. ТУЛЕМИСОВА, Г.С. ШАБДАРБАЕВА, С.Т. ЕРНАЗАРОВА, Г.Е. ТУРГАНБАЕВА

НОВЫЙ СПОСОБ ПРИМЕНЕНИЯ

ПРОБИОТИКОВ В ПТИЦЕВОДСТВЕ

–  –  –

Приведены материалы по нетрадиционному способу применения разработанных и произведенных авторами пробиотиков «Торулакт» и «Ацидофилин В-143» в птицеводстве – аэрогенному способу. Применение аэрогенным путем пробиотика «Торулакт» довело сохранность цыплят до 99,2%, что на 8,6% больше, чем в контрольной группе, не получавшей пробиотик. Среднесуточный привес был больше на 18%.

Достоверно показано положительное влияние пробиотиков на компенсаторные возможности организма цыплят при аэрогенном применении.

В настоящее время, в связи с наметившимся экономическим подъемом в РК и проводимыми Правительством РК реформами, в сельском хозяйстве наметились позитивные сдвиги. Вокруг крупных мегаполисов, таких как города Астана, Алматы, Кокчетав и др. начали восстанавливаться некогда заброшенные птицеводческие хозяйства, которые играют важную роль в обеспечении продовольственного пояса вокруг крупных городов. И, как правило, наряду со специализированными птицеводческими объединениями, где имеется полный технологический цикл, организованы хозяйства с экстенсивной системой содержания кур.

Существуют различные способы выращивания и содержания птицы, в зависимости от финансово-экономических возможностей владельцев: напольный, клеточный или комбинированный.

Однако, чаще птица находится в условиях, наиболее приближенных к естественным, что не способствует достижению высокой сохранности и продуктивности, создает зависимость этих показателей от сезона года, климатических факторов, наличия и качества кормов и др.

К тому же выгульное содержание птицы, содержание на несменяемой подстилке или комбинированным способом создают трудности проведения тщательной механической очистки, дезинвазии, дезинфекции, повышается потенциальная опасность возникновения инфекционных и инвазионных болезней. И даже клеточное содержание птицы не исключает вспышек геогельминтозов, протозоозов, которые возможны в тех случаях, когда в хозяйстве в качестве витаминной подкормки птицам используют овощи, выращиваемые на полях, удобряемых пометом больных птиц, а также при кормлении концентрированными кормами, хранившимися в помещениях, доступных для дикой птицы, грызунов, при кормлении заплесневелыми или несбалансированными кормами.

В результате таких издержек часто возникают болезни сложной сочетанной этиологии, сопровождающиеся нарушениями функций пищеварительного тракта, поносами, интоксикацией, большим отходом птицы.

Несмотря на все усилия ветеринарной службы по борьбе с кишечными инфекциями, усовершенствованию схем применения известных и поиска новых антибиотиков, заболеваемость и падеж молодняка, вызванные болезнями желудочно-кишечного тракта, остаются высокими. К тому же развитие заболевания зачастую усугубляется погрешностями в кормлении и содержании, что делает их еще более опасными для молодняка. В промышленном птицеводстве желудочно-кишечные заболевания занимают второе место после вирусных заболеваний и являются основной причиной гибели молодняка птицы. Особенно опасны они для молодняка, резистентность которого к заболеваниям формируется примерно к 19 дню жизни. Среди них основным кишечным заболеванием бактериальной этиологии является колибактериоз, возбудитель которого, как правило, обладает множественной лекарственной устойчивостью. Так, по данным ряда исследователей, количество птицы, павшей от колибактериоза в хозяйствах, достигает 55% от общих потерь, а павшей от эймериоза достигает иногда 90-100% [1,2].

Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан

В птицеводческих хозяйствах возникают болезни различной этиологии – незаразной и заразной. Это и болезни, связанные с нарушением обмена веществ: авитаминозы А, В1 (алиментарный полиневрит), В2, В6, РР, Н, Вс, Е, Д (рахит), недостаток пантотеновой кислоты (дерматоз), витаминов В10, В11, В12, недостаток минеральных веществ, дефицит кальция и фосфора, гиперпротеиноз, каннибализм (расклев), расклев и поедание яиц, алиментарная дистрофия, болезни пищеварительного аппарата, такие как «твердый зоб», воспаление железистого желудка, диспепсия, возникающие при поедании сильно набухающих кормов, недоброкачественных, плесневелых кормов, отравляющих веществ, при паразитировании гельминтов тетрамерисов или рибеироев, болезни эмбриона, кормовые отравления, отравления химикатами, аммиачная слепота. Это и инфекционные болезни бактериальной этиологии, такие как пастереллез (холера), пуллороз (бациллярный белый понос или ББП), тиф, паратиф, туберкулез, стрептококкоз, стафилакоккоз, инфлюэнца, пастереллез, псевдотуберкулез, колибациллез, некробактериоз, нейролимфаматоз, саркоматоз, фузариоз, колибактериоз, колисептицемия, стрептококкоз, спирохетозы, респираторный микоплазмоз, орнитобактериоз. Это и инфекционные болезни вирусной этиологии, такие как болезнь Ньюкасла, инфекционный ларинготрахеит (ИЛТ), птичий грипп, вирусная болезнь Марека (ВБМ), орнитоз (пситтакоз). Это и инвазионные болезни как протозоозы, так и гельминтозы: эймериоз, гистомоноз, лейкоцитозооз, эритроцитозооз, цистоматоз, плазмидиоз, лептоспироз, саркоспоридиоз, гемопротеоз, аскаридиоз, гетеракидоз, капилляриоз, амидостоматоз, дрепанидотениоз, райетиноз. При всех вышеперечисленных болезнях наряду со специфическим лечением патогенетическое и симптоматическое лечение сбалансированным щадящим кормлением, диетотерапией (применением пробиотиков) дает значительное улучшение и быстрое восстановление организма.

С учетом новых условий хозяйствования, имеющего, в основном, частный характер, сохранность закупленной птицы, ее рациональное использование с меньшими затратами приобретают все большую актуальность.

Поэтому рекомендуемые нами относительно недорогие биопрепараты пробиотического действия вполне могут быть использованы для улучшения продуктивных качеств птицы, увеличения резистентности организма, как «антисептики» при лечении, как «антагонисты» гнилостной микрофлоры кишечного тракта при болезнях различной этиологии (Синявский, 1998; Тарасенко и др.,1998; Толеген, Ратникова, 2000; Дудикова, Тулемисова, 2000; Тулемисова, Касенова, Шабдарбаева, 2002; Шабдарбаева, Тулемисова, 2002) [3, 4, 5, 6,7,8].

Крупные птицефабрики обычно получают комбикорма с комбикормовых заводов, где их готовят по рецептам, разработанным научно-исследовательскими учреждениями в соответствии с нормами потребности птицы в питательных веществах. Мелким хозяйствам, частным предпринимателям зачастую они не доступны из-за дороговизны, невозможности выкупать корма большими партиями. Поэтому они часто используют несбалансированные по тем или иным компонентам, приготовленные кустарным способом смеси, что может быть причиной различных авитаминозов, кормовых отравлений, нарушений со стороны пищеварительного тракта, проникновения в организм возбудителей инфекций, гельминтов, простейших, нарушений обмена веществ.

Таким образом, все вышеизложенное свидетельствует о целесообразности применения биопрепаратов пробиотического действия, приготовленных на основе молочнокислых бактерий и дрожжей, в качестве симптоматических, иммуностимулирующих и корректирующих патогенез средств с лечебной и профилактической целью.

Внедрение в технологический цикл производства продукции птицеводства дачи препаратов пробиотического действия позволяет создать эпизоотическое благополучие хозяйства и обеспечить получение безопасной продукции, свободной от эпидемиологически опасной и условнопатогенной микрофлоры и от паразитов.

Назначение пробиотиков – оздоровлять пищу, регулировать бактериальную колонизацию пищеварительного тракта, способствовать нормализации пищеварения, влиять на процессы репарации слизистой оболочки желудочно-кишечного тракта и количество иммунокомпетентных клеток в периферической крови. Пробиотики – эффективные лечебно-профилактические средства, обладают ростостимулирующим действием, физиологичны, являются экологически чистыми препаратами, безвредны для животных, технологичны для группового применения.

№ 6. 2011 В настоящее время в странах ближнего и дальнего зарубежья, в Казахстане проводятся исследования в области совершенствования пробиотических препаратов, создания новых композиций и усовершенствования технологий их создания, схем и способов применения [9-20].

Нами предложены пробиотики «Торулакт» и «Ацидофилин В-143» на основе молочнокислых бактерий и дрожжей, состав которых защищен охранными документами РК.

Схемы применения пробиотиков в птицеводстве. В зависимости от направления деятельности хозяйства (племенное, яичное или бройлерное), способа содержания птицы (клеточное, напольное или комбинированное), вида используемого оборудования для кормления птицы (лотковое, желобковое или кормораздаточная линия), цели применения пробиотика (лечебная или профилактическая), дозировка, схема и способы дачи могут быть разными.

В племенном птицеводстве с целью коррекции иммунодефицитных состояний, увеличения резистентности организма маточного стада и получения полноценного племенного яйца и потомства препарат назначают в дозе 75 мг/кг 1 раз в сутки в течение 10 дней. В яичном птицеводстве с целью сохранности поголовья и увеличения продуктивности препарат назначают в дозе 100 мг/кг 1 раз в сутки в течение 5 дней. Молодняку птицы с целью увеличения сохранности поголовья, лучшего роста и развития и профилактики болезней пищеварительного тракта различной этиологии рекомендуется препарат в дозе 75 мг/кг 2 раза в сутки в течение 5 дней с суточного возраста. При вспышках инфекций, протозоозов и гельминтозов, протекающих с нарушениями функции пищеварительного тракта, данные препараты рекомендуются в качестве патогенетического и симптоматического средства в дозе 150 мг/кг 2 раза до нормализации клинического статуса [7,8].

Цель исследования: Изучить эффективность применяемых пробиотиков «Торулакт» и «Ацидофилин В–143» при новом нетрадиционном – аэрозольном - способе применения.

Методы исследований: Применение пробиотиков проводили аэрогенно. Изучение эффективности пробиотиков при аэрогенном способе применения проводили на основании данных по сохранности поголовья, по привесам, по изменению гематологических и биохимических показателей крови у опытных и контрольной групп птицы.

Результаты. В литературных данных в основном описано 2 способа применения пробиотиков – скармливание и выпаивание. В птицеводстве наиболее широко используются эти 2 способа – выпаивание с водой и смешивание с кормом. Как известно, не всегда какой-либо способ применения пробиотиков бывает эффективен. Это зависит от дозы, схемы и формы дачи препарата.

Нами были проведены исследования по сравнительному изучению эффективности пробиотиков «Торулакт» и «Ацидофилин В–143» при аэрогенном способе применения.

Аэрогенный способ применения пробиотиков. Ученые заметили, что птенцы выводковых птиц (гуси, утки, куры и т.п.), вылупившись из яйца, в первые сутки не отходят далеко от гнезда матери-наседки. Обсохшие цыплята, например, размещаются в радиусе около 50-70 см. Гнезда наседок расположены вдали от мест обитания взрослых особей и от мест кормления. Так как у цыплят сильный инстинкт клевания, они клюют то, что находится около гнезда. В основном, их привлекает помет, который накопился за период насиживания яиц наседкой. Помет богат микроорганизмами из материнского кишечника: бифидо- и лактобактериями и кишечными палочками. Склевывая помет, цыпленок подселяет в желудочно-кишечный тракт материнские микроорганизмы и у него формируется нормофлора и микробный статус, а также под воздействием продуктов жизнедеятельности микроорганизмов начинают вырабатываться иммунные тела в фолликулах кишечника и активизируются иммунные органы. У цыплят проявляется резистентность с первых суток жизни. Это происходит раньше, чем в организм попадает корм.

В существующих современных технологических схемах производства птицеводческой продукции фактически отсутствует этап передачи материнского иммунитета через микроорганизмы.

Поэтому у цыплят низкая сопротивляемость, высок процент падежа и выбраковки в первые дни жизни, в том числе по причине незаразных заболеваний желудочно-кишечного тракта, а также высок риск возникновения инфекционных заболеваний.

У инкубационных цыплят микробный статус формируется на 10-14 сутки жизни, у цыплят, растущих с наседкой - на 1-3 сутки жизни. Смоделировать природную схему защиты птенцов в промышленных условиях возможно, если подселить им в желудочно-кишечный тракт полезные микроорганизмы с первых часов жизни, то есть в условиях инкубатория, и закрепить этот эффект Известия Национальной Академии наук Республики Казахстан уже в птичнике, куда поступают цыплята для выращивания. Источником микроорганизмов, способных положительно повлиять на макроорганизм, могут быть пробиотические препараты.

Пробиотик применяется на выведенном молодняке с целью наиболее раннего подселения полезных микроорганизмов в желудочно-кишечный тракт птицы и дальнейшего формирования нормальной микрофлоры в пищеварительных органах, ранней профилактики дисбактериоза.

Нами было предложено использовать пробиотики в аэрозольной форме в инкубаториях для однодневных цыплят, сразу же после их вылупления для заселения желудочно-кишечного тракта положительной микрофлорой. При транспортировке, когда птица размещена в ящики, проводится следующий этап подселения пробиотиков в пищеварительные органы, для чего цыплят сверху равномерно посыпают пшеном, предварительно замоченным на 1,5–2 часа в закваске, во время отстоя и транспортировки цыплята склевывают пшено и тем самым подселяют полезные микроорганизмы препарата в желудочно-кишечный тракт. Во время отстоя в «цыплячей» комнате инкубатория (перед транспортировкой), цыплят в ящиках обрабатывают пробиотиками при помощи спрея (технологически это похоже на вакцинацию инфекционного бронхита). Капельки пробиотика, зависающие на пухе, цыплята склевывают друг с друга и тем самым препарат напрямую попадает в желудочно-кишечный тракт. После обработки перед транспортировкой цыплята обязательно должны обсохнуть.

Опыты ставились на трех группах суточных цыплят по 500 голов в каждой, весом от 40-50 гр. Аэрогенную обработку проводили в выводном шкафу инкубатория, генератором САГ-1 при давлении не более 1,5 атм.

Экспозиция длилась 5 минут, на этот период вентиляция была отключена. Расход пробиотика составил ориентировочно 15 см3 на 1м3.

Цыплят 1 опытной группы обработали пробиотиком «Торулакт», 2 опытную группу препаратом – «Ацидофилин В-143», контрольную группу цыплят пробиотиком не обрабатывали (таблица 1).

Анализируя результаты испытания аэрогенного применения пробиотиков по показателю сохранности поголовья птицы, установили, что аэрогенное применение пробиотика «Торулакт»

обеспечило высокую сохранность поголовья молодняка – 99,2%, что на 8,6% больше контрольной группы, а показатель среднего живого веса у цыплят увеличился на 0,8 гр., в процентах к привесам контрольной группы составил на 18% больше в сравнении с контролем.

–  –  –

Аэрогенное применение пробиотика «Ацидофилин В-143» дало более низкие результаты:

так, сохранность поголовья птицы составила на 8,0% больше, чем в контрольной группе, а показатель среднесуточного привеса по сравнению с контролем составил всего 0,3 гр. или на 6,8% больше контроля.



Pages:   || 2 |
Похожие работы:

«УДК 636.084.413 ББК 45.4 Т-49 Тлецерук Ирина Рашидовна, кандидат сельскохозяйственных наук, заведующая лабораторией факультета аграрных технологий Майкопского государственного технологического у...»

«РОССЕЛЬХОЗНАДЗОР ИНФОРМАЦИОННО-АНАЛИТИЧЕСКИЙ ЦЕНТР Ветеринарно-эпидемиологическая обстановка в Российской Федерации и странах мира №239 11.12.12 Официальная Никарагуа: болезнь Ньюк...»

«СХЕМА ВОДООТВЕДЕНИЯ СЕЛЬСКОГО ПОСЕЛЕНИЯ ТЕМПОВОЕ НА ПЕРИОД ДО 2023 ГОДА СХЕМА ВОДООТВЕДЕНИЯ СЕЛЬСКОГО ПОСЕЛЕНИЯ ТЕМПОВОЕ ДО 2023 ГОДА СОДЕРЖАНИЕ ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ О МУНИЦИПАЛЬНОМ ОБРАЗОВАНИИ РАЗДЕЛ II: ВОДООТВЕДЕНИЕ 1. Существующее положение в сфере водоотведения муниципального...»

«Анисимов, О.А., Лавров, С.А., 2004. Глобальное потепление и таяние вечной мерзлоты: оценка рисков для производственных обьектов ТЭК. Технологии ТЭК (3): 78-83. Глобальное потепление и таяние вечной мерзлоты: оценка рисков для п...»

«О.В. Новоселова Тверская государственная сельскохозяйственная академия, г. Тверь ФУНКЦИОНАЛЬНО-СЕМАНТИЧЕСКИЕ КРИТЕРИИ КОММУНИКАТИВНОЙ СПРАВЕДЛИВОСТИ / НЕСПРАВЕДЛИВОСТИ МЕНАСИВНЫХ ВЫСКАЗЫВАНИЙ FUNCTIONAL AND SEMANTIC CRITERIA OF COMMUNICATIVE FA...»

«Панкова Татьяна Анатольевна АДАПТИВНОЕ НОРМИРОВАНИЕ ОРОШЕНИЯ ЛЮЦЕРНЫ НА ТЕМНО-КАШТАНОВЫХ ПОЧВАХ СУХОСТЕПНОГО ЗАВОЛЖЬЯ Специальность 06.01.02 – Мелиорация, рекультивация и охрана земель Диссертация...»

«УДК 631.1 ББК 65.321 Авдюшкин Д.В. ОЦЕНКА ПРИВЛЕКАТЕЛЬНОСТИ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННОГО ПРЕДПРИЯТИЯ ДЛЯ РАЗРАБОТКИ И РЕАЛИЗАЦИИ ПРОЕКТОВ Avdyushkin D.V. ASSESMENT OF ATTRACTIVENESS OF THE AGRICULTURAL ENTERPRISE FOR PROJECTS DEVELOPMENT AND REALIZATION Ключевые слова:...»

«ПРОЕКТ УТВЕРЖДАЮ Глава муниципального образования – Борисовское сельское поселение Александро-Невского муниципального района Рязанской области /Т.В.Сельянова/ М.П. СХЕМА ТЕПЛОСНАБЖЕНИЯ МУНИЦИПАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ – БОРИСОВСКОЕ СЕЛЬС...»

«ISSN 2308-4804. Science and world. 2014. № 7 (11). Agricultural sciences Сельскохозяйственные науки УДК 636.295/296 СОВРЕМЕННОЕ СОСТОЯНИЕ И ПЕРСПЕКТИВЫ РАЗВИТИЯ ВЕРБЛЮДОВОСТВА В РЕСПУБЛИКЕ ТЫВА Ч.К. Болат-оол1, С.Д. Мо...»

«Последняя Земля Самый эффективный метод спасения Планеты, Животных и Человечества. by Life, 4vegan.ru Интро Люди по всему миру стараются делать такой выбор, чтобы как можно меньше противоречить своим идеалам. Мы упрощаем нашу жизнь, приобретая меньше, сохраняем ресурсы. Потому что мы знаем: на Земле запасов...»

«Федеральное агентство по образованию Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования НОВГОРОДСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ имени Ярослава Мудрого Институт сельского хозяйства и природных ресурсов Кафедра географии, страноведения и туризма УТВЕРЖДАЮ Декан ФЕН...»

«РОССЕЛЬХОЗНАДЗОР ИНФОРМАЦИОННО-АНАЛИТИЧЕСКИЙ ЦЕНТР ЭПИЗООТИЧЕСКАЯ СИТУАЦИЯ В СТРАНАХ МИРА №109 04.06.14 Официальная Алжир: болезнь Ньюкасла информация: МЭБ Китай: чума мелких жвачных Комментарий ИАЦ Сообщения СМИ:...»

«SCIENCE TIME НЕКОТОРЫЕ АСПЕКТЫ ПОНЯТИЙ "РЫНОЧНАЯ ИНФРАСТРУКТУРА" И "ГРАНИЦА РЫНКА" Касьянова Евгения Николаевна, Чистяков Сергей Владимирович, Курская государственная сельскохозяйственная академия,...»

«Программа комплексного развития коммунальной инфраструктуры Чукмарлинского сельского поселения Сармановского муниципального района РТ ДО 2025 ГОДА с. Чукмарлы Утверждена постановлением Чукмарлинского сельского поселения от19.02....»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "КУБАНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ" ФАКУЛЬТЕТ ЗАЩИ...»

«РЕАБИЛИТАЦИЯ АНТРОПОГЕННО -ЗАСОЛЕННЫХ ПОЧВ ЮГА КЫРГЫЗСТАНА Ызаканов Т.Ж., старший научный сотрудник отдела науки Кыргызский национальный аграрный университет им.К.И.Скрябина Ключевые слова: староорошаемые туранские сероземы, заболачивание, засоление,...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ОБРАЗОВАНИЯ "РЯЗАНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРОТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ П.А.КОСТЫЧЕВА"Утверждаю: Председатель учебно-м...»

«Министерство сельского хозяйства Российской Федерации федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение (ОчГРАРНЫЙ высшего образования УНИВЕРСИТЕТ "Санкт-Петербургский государственный агра...»

«УДК 636.083.17 УСОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ СОДЕРЖАНИЯ СВИНОМАТОК В ЦЕХЕ ВОСПРОИЗВОДСТВА Я.П. Крыця, канд. вет. наук, доцент Луганский национальный аграрный университет Установлена эффективность использования...»

«ОТЧЁТ О ПРИМЕНЕНИИ ПРЕПАРАТОВ "СЕЛЕНОЛИН®" И "НАТРИЯ НУКЛЕИНАТ", производства ЗАО "Биоамид" (РФ, г. Саратов), В ХОЗЯЙСТВАХ АГРОПРОМЫШЛЕННОГО КОМПЛЕКСА РЕСПУБЛИКИ БЕЛАРУСЬ ЗА 2012 г. Ветеринарный препарат "Се...»

«ПРОХОРОВА ЛЮБОВЬ НИКОЛАЕВНА СОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ ТЕХНОЛОГИИ ВОЗДЕЛЫВАНИЯ КУКУРУЗЫ НА ЗЕРНО В ЗОНЕ ДЕРНОВО-ПОДЗОЛИСТЫХ ПОЧВ ПОВОЛЖЬЯ 06.01.01. – общее земледелие, растениеводство АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата сельскохозяйственных наук Саратов –...»

«BCC Invest 6 марта 2017 г. Обзор рынка на 06.03.2017 г. Рынок: KASE Казахстанский фондовый индекс по итогу 1 577.86 0.61% Индекс KASE торгов завершил день ниже нулевой 1 345.9 108.1 Объем сделок, в тыс. usd отметки на объемах выше среднего. 47 031.1 716.5 Капитализация в млн. KZT Слабая динамика тор...»

«№113 Науково-технічний бюлетень ІТ НААН Ключевые слова: бык, баланопостит, "Прозон", "ОКО", тепловизор, постоцитограма. BALANOPOSTHITIS METHODS OF DIAGNOSIS AND TREATMENT OF BULLS WITH NONSPECIFIC V. Koshevoy, S. Naumenko, Kharkov State Zooveterinary Academy The article presen...»

«Во имя Аллаха, Милостивого, Милосердного! Хвала Милосердному Аллаху, Творцу Вселенной, Повелителю трёх миров, который возвёл небесную твердь без опор и расстелил Землю как ложе. Мир и благословение Аллаха Его рабу и посланнику Мухаммеду, да жи...»

«БОГОСЛОВСКИЕ ТРУДЫ, XI ПУБЛИКАЦИИ В ПОХВАЛУ ПРЕПОДОБНОМУ СЕРГИЮ, ИГУМЕНУ РАДОНЕЖСКОМУ, ВСЕЯ РОССИИ ЧУДОТВОРЦУ (В связи с 550-летием прославления, 1422—1972) Славится Русская земля своими святыми угодниками, и ср...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Саратовски...»

«Электронное научное издание Альманах Пространство и Время. Т. 4. Вып. 1 • 2013 Специальный выпуск СИСТЕМА ПЛАНЕТА ЗЕМЛЯ Electronic Scientific Edition Almanac Space and Time vol. 4, issue 1 Special issue 'The Earth Planet System' Elektronische w...»

«"Стандартизация и сертификация сельскохозяйственных объектов и продукции"Вопросы для семинаров: Семинар 1 по теме: "Показатели качества и безопасности растительных кормов: характеристика, пути загрязнения и методы определения показателей".1. Назовите показатели качества растительных кормов.2. Понятие "сыр...»








 
2017 www.ne.knigi-x.ru - «Бесплатная электронная библиотека - электронные матриалы»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.